Introducción
El cultivo de cocoteros (Cocos nucifera, L) es de importancia económica, social y ecológica para la República Dominicana, Su producción genera divisas, empleos e ingresos, alimentos y otros subproductos para el mercado local e internacional. Además las palmas de cocos embellecen las playas de las principales zonas turísticas del país, proporcionándoles su belleza tropical al paisaje, y por consiguiente lo que incentiva la visita de turistas al país.
En Republica Dominicana, el área cultivada es de 22,491 ha. 359, 856 tas. Con una producción promedio anual de 2,227, 872.8, Unidades en las zonas costeras Este y Nordeste, (Secretaría de Estado de Agricultura, 2006). La producción de cocos frescos y subproductos se destina a los mercados nacionales e internacionales, generando este ultimo US$ 4, 553,143.00 Dólares, (CEI-RD, 2005) por concepto de las exportaciones.
En el año 2006 la República Dominicana recibió la visita de 2, 612,256 de turistas procedente de diferentes partes del mundo, generando el sector turístico la entrada de 3,750 dólares y mas de 300 mil empleos ( Martínez, 2006).
La enfermedad Amarillamiento Letal del Cocotero (ALC) es considerada como la más devastadora que afecta este cultivo, la cual ha matado cientos de miles de palmas en Key West, Florida, USA, desde el 1936.En el Caribe ha provocado la desaparición de este cultivo, destruyendo millones de palmas de coco durante los últimos 40 años, (OIRSA, 2002). El ALC es causada por un fitoplasma, transmitido por el insecto vector Myndus crudus Van Duzee, del orden Homóptera: Familia Cixiidae. (Howard, 1983).
El ALC ha sido reportada en La República Dominicana en varias ocasiones desde año 1962, afectando plantaciones domésticas en las localidades de la provincia de Puerto Plata, Santiago y Dajabón (Hichez, 1971). Recientemente fue reportado un brote en la localidad de Andrés, Boca Chica, Provincia Santo Domingo. (Martínez et al, 2007).
La detección de esta enfermedad es realizada mediante la técnica de Reacción en Cadena de la Polimerasa, (PCR), la cual es una técnica molecular que amplifica bandas de Ácido nucleicos.
Debido a que estos agentes patógenos no se pueden cultivar invitro, se recomienda su diagnóstico usando la técnica de Reacción en Cadena de la Polimerasa (PCR), la cual es una técnica molecular que amplifica bandas de acido nucleico. La PCR es recomendada para la detección de fitoplasmas y para la caracterización genética de estos. Conocer las razas del fitoplasma permitiría diseñar estrategias de manejo para prevenir la diseminación y daños de la enfermedad en las plantaciones comerciales.
I. PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA
1.1. Descripción y formulación del problema.
La enfermedad Amarillamiento Letal del Cocotero (ALC) ha sido reportada en República Dominicana, desde el año 1962; afectando plantaciones domésticas en las localidades de las provincias de Puerto Plata, Santiago y Dajabón. En cada aparición de la enfermedad han sido aplicada medidas como la tumba y quema de plantas enfermas para evitar la rápida dispersión de la misma (Hichez, 1971).
La aparición más reciente de ALC fue reportada en el año 2006 en las costa Sureste en la localidad de Andrés, Boca Chica, observándose un mayor número de plantas sintomáticas, que los reportados en los brotes ocurridos en años anteriores en la región Norte, (Martínez, comunicación personal 2006).
Esta enfermedad representa una potencial amenaza para lo producción de los cocoteros de la República Dominicana, ya que esta ha sido reportada como la mas devastadora del cultivo de palmas de cocos; Los síntomas iniciales se caracterizan por la caída prematura de los frutos de todo los tamaños, las hojas inferiores, intermedias y superiores se tornan amarillas, las inflorescencias y espátulas se necrosan; en la etapa final caen todas las hojas secas, quedando solo el tallo erecto (Córdova ,1995).
1.2 OBJETIVOS
1.2.1 Objetivo general:
Diagnóstico y caracterización de razas de fitoplasmas del amarillamiento letal del coco.
1.2.2 Objetivos específicos
a) Determinar la presencia del fitoplasma.
b) Diferenciación genética de las razas de Fitoplasmas presentes en el país.
c) Establecer la relación existente de los fitoplasmas encontrados en La República Dominicana con los de otros países.México, Honduras, Belice, Guatemala, USA (Florida), Jamaica, Cuba, Caimán y Haití.
1.3 – Justificación
Para la República Dominicana el cultivo de cocoteros es de gran importancia debido a que el mismo es utilizado en el sector agrícola y turístico, generando divisas para el pais, como parte de la exportación del producto, así como por concepto del turismo, atraído por el cocotero.
La producción de cocos frescos, rayado, deshidratado, y subproductos para la industria de cosmetología, alimentaría y medicinal se destina a mercados locales e internacionales, tanto de Estados Unidos, La Unión Europea, Canadá, Antillas Menores, Islas Vírgenes, Brasil, Puerto Rico, Haití y otros. La generación de divisas en el año 2005, por este concepto, alcanzaron un valor de US$ 2, 282, 987.80, Dólares. En el 2004 y US$ 4, 553,143.00, dólares (CEI-RD, 2005). Es de importancia señalar que A nivel nacional miles de familias dependen de este cultivo para su subsistencia.
Las palmas de cocos ubicadas en las playas de las principales zonas turísticas del país, proporcionan la belleza tropical al paisaje, lo que incentiva la visita de turistas. En el año 2006 la República Dominicana recibió la visita de 2,612,256 de turistas procedentes de diferentes partes del mundo, generando el sector turístico la entrada de 3,750 dólares. Mas de 300 mil. Empleos (Martínez, 2006).
Las oportunidades de negocios para Las Republica Dominicana están en desarrollo con las exportaciones, ya que Las Naciones de Norteamérica, Europa, Suramérica y el Caribe demandan mayor cantidad de coco fresco, procesado y una amplia variedad de subproductos. En la actualidad se ha retomado el uso del aceite de coco para usos culinarios, como aceite de coco virgen. En los Estados Unidos y Europa, el ½ litro se vende a US$16.00 y US$15.75, respectivamente. Esto representa una oportunidad para diversificar la producción e incrementar las divisas generadas por este cultivo (CEI-RD 2006).
1:4 Diagnostico y Caracterización
El diagnóstico y el conocimiento de la diversidad genética del agente patógeno existente en el país ayudaran a diseñar estrategias de manejo para prevenir la diseminación y daños de la enfermedad a las zonas de producción comercial. De manera que el conocimiento de las razas ayudará a diseñar estrategias de manejo para prevenir la diseminación y daños hacia plantaciones comerciales.
Esta investigación crearía las bases para la continuidad del cultivo y los beneficios que genera para más de 1500 productores de coco, procesadores, exportadores y otros miembros la República Dominicana de la cadena productiva así como también la entrada de divisas y fuentes de empleos de ambos sectores y la preservación del paisaje natural que le proporcionan las palmas de cocos a las playas del país. Creando las bases para que ambos sectores sean mas competitivos y sostenibles, principalmente en momentos de la apertura de nuevos mercados.
1.4 Alcance y limitaciones
1.4.1 Alcance
El estudio comprenderá las localidades de la zona Norte (Puerto Plata, Santiago, Dajabón) y Sureste (Andrés, Boca Chica) donde ha sido reportada la enfermedad y en las regiones de producción comercial Nordeste (Maria Trinidad Sánchez, Samaná) y Este (Hato Mayor, El Seibo, La Altagracia, La Romana) del país. Donde no se ha reportado. y para asegurar que estas zonas se encuentran libre de la enfermedad.
1.4.2 Limitaciones
Para determinar la secuencia de los pares de bases de los posibles fitoplasmas presentes en el país, será necesario enviarlas a centros internacionales que se dedican a esa actividad, ya que en la República Dominicana no existen las posibilidades para realizar esas técnicas.
11. MARCO TEÓRICO
2.1 Generalidades
Cocos nucifera L. (perteneciente a la familia Arecaceae), es conocido comúnmente como palma de coco. Probablemente sea nativa de las islas del pacifico, y hoy en día se cultiva en casi todos los trópicos.
Es la palmera más cultivada e importante del mundo, ya que actualmente es la principal especie productora de grasa vegetal. Es una de las plantas que proporciona una mayor diversidad de productos en el mundo, siendo una fuente primaria de alimento, bebida y de abrigo. La distribución de la palma de coco se extiende por la mayoría de las islas y de las costas tropicales y en algunos lugares fuera de la zona tropical.
El principal producto exportado es copra sin procesar seguido del coco deshidratado.
La diversidad y potencialidad del coco contribuye de manera considerable al sector económico de los países productores.
2.2 Antecedentes
El amarillamiento letal del coco (ALC) esta considerada como una de las enfermedades más importantes que afectan la producción de cocos, ha destruido los cocoteros hasta en un 100% en algunos países (Harries 1978). Es causada por un fitoplasma, Esta devastadora enfermedad se encuentra en México, Honduras, Belice, Guatemala, USA (Florida), Jamaica, Cuba, Gran Caimán, Haití y República Dominicana, (Beakbane et al 1972).
Muchos de estos países han tenido experiencias desastrosas como es el caso de Jamaica, donde el 100% de sus plantaciones fueron destruidos en un período de cuatro años, estimándose las pérdidas en cinco millones de palmas en un período de 20 años (Romney (1983). En Honduras ha destruido el 90% de los cocoteros (Plavsic-Banjac et al., 1972).
Es un organismo que tiene características similares a las bacterias, tiene citoplasma, ribosomas, ADN y está restringido a las células del floema. Es transmitido por insectos siendo uno de los mas importante Myndus crudus, Van Duzze (Homoptera: Cixidae), (Howard et al, 1983; Howard, 1995).
La dispersión del patógeno ocurre aparentemente a través de dos mecanismos, (McCoy et al 1983). Uno es mediante un centro localizado de infección, es decir, la enfermedad aparece en una o dos palmas y de ahí se extiende al azar a palmas contiguas. El segundo mecanismo de dispersión del ALC es a grandes distancias en forma discontinua, seguido por dispersión localizada. La distancia cubierta por estos saltos puede ser de decenas de kilómetros y son favorecidos por vientos fuertes como el de los huracanes. Por lo tanto el patógeno se puede dispersar muy rápido como ha ocurrido en México y en Honduras, (Córdova, 1995).
M. crudus se alimenta de plantas enfermas y luego se traslada a plantas sanas, diseminando así la enfermedad. Se cree que la grama ornamental utilizada para embellecer el entorno de las zonas turísticas es utilizada para su desarrollo (Piña, 1995). Se han reportado diferentes razas del fitoplasma causantes del amarillamiento letal del cocotero en el Caribe y en Africa, (Harrison et al.1994).
Los síntomas de ALC en el Caribe y África muestran similitud, pero se han observado diferencias en la epidemiología y en la susceptibilidad en los materiales, por lo que se asume que diferentes fitoplasmas causan la enfermedad. Los cocoteros y palmas susceptibles mueren rápidamente, en un período entre 4 y 6 meses desde la aparición de los primeros síntomas (Edén-Green, 1995)
.
Los síntomas de ALC observados en Puerto Plata, han sido confirmados por el Centro de Investigación Científica de Yucatán (CICY) de México, en colaboración con La Universidad de La Florida, de Los Estados Unidos, en muestras enviadas en el año 1997. Estas muestras se analizaron mediante la técnica de La Reacción en Cadena de la Polimerasa- PCR, las mismas resultaron positivas al ALC. Esta técnica ha sido. Usada para detectar el fitoplasma en el embrión del fruto. (Córdova, et al, 2003).
Esta enfermedad se había reportado desde hace mas de 40 años hasta el año 2006, siendo detectado y confirmado un nuevo brote en la costa Sur en la localidad de Boca Chica, (Martínez et al, 2007)
111. MATERIALES Y MÉTODOS.
3.1 Localización
El estudio abarcará las Regiones Norte (Puerto Plata, Dajabón) y Sur (Andrés Boca Chica) donde se ha reportado la enfermedad de plantaciones comerciales, en las regiones Nordeste (Maria Trinidad Sánchez, Samaná) y Este (Hato Mayor, El Seibo, La Altagracia y La Romana) de la República Dominicana, donde no se ha reportado la enfermedad. Con la finalidad de confirmar que la zona continúa libre de ALC.
3.2 Tipo de investigación.
Es una investigación descriptiva para detectar y caracterizar la variabilidad genética del fitoplasma del ALC de las palmas de coco en zonas afectadas por ALC.
3.3. Selección de plantas a muestrear.
En cada lugar donde se ha reportado la enfermedad se elegirán 5 plantas que presenten síntomas característicos de ALC y 5 plantas asintomaticas. En cada planta se tomaran muestras de hojas, troncos e inflorescencias para determinar la presencia o no del fitoplasma. En áreas libre de la enfermedad, se tomaran muestras de 10 plantas.
Se utilizará un receptor de Sistema de Posicionamiento Global (GPS) para marcar las zonas de incidencia, los puntos ubicados se utilizaran para construir un mapa de distribución de la enfermedad
3.4. Toma de muestras
Las muestras se tomaran de tronco hojas jóvenes e inflorescencias. Para la toma de muestra se escogerán con síntomas característicos de la etapa temprana de ALC. En el caso las inflorescencia, se cortarán cerrada la que está anterior a la inflorescencia abierta y las muestras de troncos se tomaran realizando un orificio de 10 a 12 cm. de profundidad, a una altura de1.0 a 1.5 metros del suelo mediante un taladro eléctrico.
Las muestras colectadas se pondrán en papel ligeramente húmedo y se depositara en una bolsa plástica previamente identificada. Luego serán colocadas en una hielera, para ser transportada al laboratorio.
3.3 Análisis de Laboratorio
Las muestras serán llevadas al laboratorio de Virología del Centro de Tecnologías Agrícolas (CENTA) del Instituto Dominicano de Investigaciones Agropecuarias y Forestales (IDIAF). Estas se analizaran mediante la técnica Reacción en Cadena de la Polimerasa (PCR).
En la investigación se realizaran tres tipos de análisis:
a) nested PCR para la detección de fitoplasmas.
b) Restriction fragments length polime (RFLPs), para la diferenciación de diversidad genética.
c) Secuenciación de las muestras seleccionadas.
El ADN de las muestras se amplificará utilizando iniciadores universales P1-P7 para determinar la presencia de fitoplasma en las muestras, luego se realizará con un PCR anidado con los iniciadores específicos LYSr y LY50F.
3.4 Detección del fitoplasma
El producto del PCR será fragmentado con electroforesis en un gel de Agarosa al 5% para analizar los patrones de las bandas obtenidas. Para la detección del fitoplasma. El producto obtenido del PCR será secuenciado para relacionar la similitud con otros fitoplasmas existentes en las regiones del área. La caracterización molecular de las razas, nos permitirá hacer comparaciones con los diferentes aislamientos del patógeno para determinar si existen diferentes razas del fitoplasma en la República Dominicana.
3.6 - Cronograma de actividades
Actividad E F M A M J J A S O N D E F M A M
Compra reactivos
Recolección de muestras x x x
Análisis de laboratorio x x x
Análisis de resultados X X
Presentación tesis
Publicación
3.5 -Presupuesto Para realizar esta investigacion.
ITEM ARTICULO ESPECIFICACIONES UNIDADES CANTIDAD PRECIO UNIT VALOR RD $ Valor US $
1 Tubos eppendorf 0,5 µl Funda / 500 1 2000 2000 60.60
2 Tubos eppendorf 1,5 µl Funda / 500 1 2500 2500 75.75
3 Punta micropipetas 1-10 ul Funda / 1000 2 700 1400 42.42
4 Punta micropipetas 200-1000 ul Funda/ 1000 2 1200 2400 72.72
5 Guantes deshechables Mediano/largo Cajas/ 100 3 195 585 17.72
6 Iniciadores 24 bp 2 Vials/50 µl 2 3.910,51 7821,02 237.00
7 Taq polimerasa 250 unid/ µl 1 vials 2 4620 9240 280.00
8 dNTPs 10 mM dATP, dCTP, dGTP and dTTP Kit de 0.5 mL 1 5280 5280 160.00
9 PCR mix Set 1 4.780,00 4780 144.80
10 Nitrógeno liquido litros 4 170 680 20.60
11 Agarosa Grado PCR. Disolución Intermedia. Peso Molecular < 1000 bp. Sobre /100 gr 1 7755 7755 235.00
12 Fundas plásticas sellables 6x10/10x 14 Pulg Cajas/ 100 3 300 900 27.27
13 Binoculares 1 3500 3500 106.00
14 Sub-Total 48.841,02 1480.03
15 Gastos Operativos
16 Combustible 12 viajes/35 gl /Km Viajes 12 1770 21240 643.00
17 Viáticos 2 técnicos/Chofer 36 300 10800 327.27
18 Salario/día 1 Obrero toma de muestras de inflorescencia 8 200 1600 48.48
19 Elaboración e impresión Tesis 6.400,00 193.94
19 Sub-Total Gastos Op 40.040,00 1019.39
20 Sub-Total Gastos Op /Reactivos 88.881,02 2499.42
21 Imprevistos 10% 8888,102 249.90
22 Gran Total 97.769,12 2749.36
Nota:
Este es el presupuesto estimado, para realizar esa investigación, pero todavía no han llegado
al Centro de Tecnologías Agrícolas del IDIAF, los equipos de laboratorio donde se analizaran las muestras.en mexico yucatan es donde hay condiciones hasta el momento para la realización del mismo.
Bibliografía:
1 - Almeyda, Isidro, 1998.Diagnóstico molecular del Amarillamiento Letal del cocotero,
Centro de Investigación Regional del Sureste, Yucatán, México.
2- Beakbane, A.B., Slater, C.H. W. and Posnette, A.F.1972. Mycoplasmas in the phloem
of coconut, Cocos Nucifera L, with lethal yellowing disease. Journal of Horticulture
Science.
3- Centro de Exportación e Inversiones de la Republica Dominicana (CEI-RD), 2005
4- Cordova, I.1995.Estudiola distribucion intraplanta y dispersion del amarillamiento
letal en los cocoteeros mediante el uso de la Reccion en cadena de la polimerasa.
5- Eden-Green, S.J. 1995. Brief history of yellowing research. In: C. Oropeza., W.F.
Howard and GR. Absburner lethal yellowing research and practical aspects. pp. 17-33.
6- Harrison, N.A., Richardson, P.A., Kramer, J.B. and Tsai, J.H. 1994. Detection of
the Mycoplasmas-like organism associated with lethal yellowing disease of palm
in Florida by polymerase chain reaction Plant Pathology.
7- Harries, H.C.1978. Lethal yellowing disease of coconut in global perspective.
Philippines journal of coconut science. Florida, Estados Unidos
8- Howard, F.W., Norris, R.C. and Thomas, D.L. (1983). Evidence of transmission of palm lethal yellowing agents by a planthopper, Myndus crudus (Homptera: Cixiidae). Tropical Agriculture, Trinidad.
9- Howard, F.W. (1995). lethal yellowing vector study. Methods of experimental
transmission. In: C. Oropeza., W.F. Howard., and GR. Absburmer: lethal yellowing
research and practical aspects.
10- Hichez, E.1971. Amarillo Letal en la Republica Dominicana. Boletín No.3
Departamento de Sanidad Vegetal, Secretaria de estado de Agricultura.
11- Martinez, Desiré, 2006.Informe Asociacion Nacional de Hoteles y
Restaurantes.Listin Diario, 19 de marzo2006.
12-Secretaría de Estado de Agricultura, 2006. Diagnóstico del Sector Agropecuario, Subsecretaria de Planificación, Departamento de Economía Agropecuaria , Santo Domingo, Republica Dominicana.
11- Plavsic-Benjac, B., Hunt, P. and Maramorosch, K. (1972). Mycoplasm-like
bodies associated with lethal yellowing disease of coconut palm. Phytopathology, 62: 298-2- 12 - Romney, D.H. (1983). Brief review of coconut lethal yellowing. Indian coconut journal.
(Este es un trabajo de investigacion
hecho por la Ing.Andrea Felix)
.
sábado, 11 de abril de 2009
SIGATOKA NEGRA, CULTIVO MUSACEA
PREAVISO BIOLOGICO EVALUACION SEVERIDAD EN PLANTACIONES
PRODUCTORAS R.D.
INTRODUCCIÓN
En el desarrollo y combate de la Sigatoca Negra en banano como en plátano, se presentan dos elementos de relación muy estrecha.
El primero de ellos es la característica vegetativa de la planta de presentar un ritmo de emisión foliar constante, lo cual produce que permanentemente este exponiendo nuevos tejidos a la posible inoculación del patógeno.
El otro factor se refiere a las condiciones de la mayor parte de las regiones productoras de banano y plátano de América Latina, que presentan característica de temperatura y humedad muy favorables a la biología del hongo. Se exceptúan las zonas altas plataneras en donde se cultiva, de forma particular, en asocio con el café o en algunas regiones de marcada época seca pero en las que se práctica el riego, con lo cual se tienden a crear ciertas condiciones que puedan resultar favorables a la biología del hongo.
Estas características, unidas a la acción de los productos funguicidas han provocado cierta evaluación en las estrategias de combate de la Sigatoka Negra, dentro de las cuales, el sistema de preaviso ha mostrado una alta eficiencia, disminución de costos y menor contaminación del medio ambiente.
La metodología del preaviso para el combate de esta enfermedad, se fundamenta en el análisis de los descriptores
biológicos y climáticos de forma tal que las aplicaciones de funguicidas se puedan efectuar en el momento apenas inicial
de desarrollo de la infección y cuando los parámetros climáticos le resultan favorables al hongo.
Con esta intervención oportuna se propicia, por reversión del ataque, un espaciamiento mayor entre los ciclos de tratamiento, niveles más bajos de enfermedad y consecuentemente plantaciones más sanas que puedan expresar mejor su potencial productivo.
Como preaviso para el combate de la Sigatoka Negra se refiere a dos sistemas: el preaviso biológico y el preaviso bioclimático. En esta ocasión trataremos únicamente el preaviso biológico, ya que para el preaviso bioclimático se requiere de ciertas condiciones, con las cuales aún no contamos.
PREAVISO BIOLÓGICO
Esta metodología es independiente del preaviso bioclimático.
En las áreas donde se inicia el desarrollo del preaviso, es el primer paso y no será hasta años más tarde que se pueda combinar con los estudios climatológicos para establecer el preaviso bioclimático.
El sistema de preaviso biológico se fundamenta en el análisis de descriptores biológicos (evaluación de la enfermedad en relación con la planta, los cuales permiten concluir en el Estado de Evolución).
Para ello, se llevan a cabo evaluaciones semanales de forma tal que la aparición de los primeros síntomas de la enfermedad sobre las hojas jóvenes (II, III, y IV) permiten determinar de forma constante y “contable” el desarrollo de la enfermedad.
Los instrumentos básicos de este sistema lo constituyen la parcela de observación y la curva del Estado de Evolución, la cual refleja el resultado de las observaciones en el campo.
PARCELAS DE OBSERVACIÓN
Para poder “medir” el desarrollo constante de la enfermedad, es necesario hacer las observaciones semanalmente sobre las mismas plantas hasta que su altura permita la observación sobre las hojas II, III y IV o como máximo hasta la emisión de la inflorescencia (Parición).
No existen reglas en cuanto a la densidad de parcelas que se necesitan en un área determinada. Ello depende de la homogeneidad de las condiciones ambientales en las zonas bananeras, bajo la premisa de que diferentes fincas (particularmente en zonas donde existan fincas pequeñas) tengan un manejo similar.
Para establecer la parcela de observación en plantaciones adultas, deberán sembrarse lotes de 40 plantas dentro de las cuales se evaluarán 10 únicamente.
Debe evitarse la ubicación de parcelas cerca de instalaciones como casas, plantas empacadoras, tendidos eléctricos, carreteras, etc., o donde se encuentren obstáculos al vuelo del avión que no puedan ser eliminados.
En fincas con siembras nuevas, las 10 plantas a evaluar pueden ser ubicadas con una distribución más amplia, debiéndose tener presente que las mismas deberán ser localizadas fácilmente por el encargado de efectuar las lecturas.
Ya sea en parcelas establecidas o plantas seleccionadas dentro de siembras nuevas, estas deberán ser identificadas individualmente, para lo cual se recomienda el empleo alfa numérico. En esta señalización la letra corresponde a la línea o hilera de plantas y el número a la posición de la planta en la hilera.
Para facilidad en la ubicación de las plantas a observar, se deberá rotular al inicio de la hilera con la letra que le corresponde y en las plantas, además de colocar una tarjeta con la identificación alfa numérica, conviene pintar en el pseudotallo, un anillo que pueda ser visible a distancia.
Cuando no se pueda sembrar nuevos lotes (40 plantas) para las parcelas de observación, procederá a elegir los hijos con 10 hojas desarrolladas de una parcela en producción y establecer con estas la parcela de observación.
REPOSICIÓN DE PARCELAS
Debido a la imperiosa necesidad de una información constante debe preverse la disponibilidad de las plantas en las que se deberán continuar las evaluaciones, una vez lleguen a la emisión de inflorescencia las que están siendo evaluadas.
Para ello, se deberán establecer las parcelas de reemplazo con suficiente anticipación a dicho momento. Esta anticipación depende del material que se esté empleando, según se trate de rizomas o plántulas provenientes de viveros (cultivo de tejidos o rebrotes), de la época en que se establezcan y las condiciones climáticas.
Generalmente el tiempo requerido para establecer la parcela de reemplazo, es de aproximadamente dos (2) meses antes que la que se está evaluando llegue a parición.
Es importante tener presente que la lectura al momento de abandonar una parcela deberá coincidir con la segunda lectura en la parcela de reemplazo, lo cual significa que en una semana dada, se llevará a cabo la lectura en las dos parcelas pero en la forma indicada, ya que de lo contrario, se pueden presentar desfases en la información y problemas con los resultados que se obtienen.
En las zonas productoras de banano que presentan un período seco prolongado y no exista riego, conviene evitar el
establecer parcelas durante el mismo. En estos casos, las
mismas deberán establecerse a la salida de la estación lluviosa.
Significan un problema las parcelas de reemplazo? En realidad el único inconveniente que presenta esta labor, es la renuencia del productor a sacrificar las plantas que deberán dar lugar a las parcelas de reemplazo. Para tal efecto, es necesario que el mismo tenga una clara conciencia de los
beneficios que se derivarán de la aplicación de la aplicación de este sistema, ya que el sacrificar una cuantas plantas, será ampliamente compensado con la economía de ciclos de fumigación en toda la finca o un área dada y además de que se tendrá una mejor condición sanitaria de la plantación y todos los beneficios adicionales que se derivarán de ello.
Existe una opción al establecimiento de parcelas de reemplazo, la cual es continuar las observaciones en los hijos.
Para ello deberán tomarse en cuenta algunas consideraciones como las siguientes:
• La modalidad podría funcionar en cultivares de bajo porte como el Gran Enano, ya que otros de parte más alto como el Valery, los hijos llagan a ser muy altos antes de que desarrollen sus hojas funcionales.
• El comportamiento del estado de evolución en hijos difiere del que se observa en las plantillas, aún cuando la tendencia resulta ser similar. La amplitud de la curva que representa la evaluación de la enfermedad difiere en ambos casos, lo que podría ocasionar dificultades de interpretación.
• En caso que se decida trabajar con hijos, conviene llevar a cabo simultáneamente por un período de tiempo dado, las evaluaciones respectivas en ambos tipos de material con el propósito de que el personal responsable de la interpretación de resultados y recomendaciones en cada uno de los materiales respecto a la enfermedad en sí.
METODOLOGÍA DE EVALUACIÓN
El “Estado de Evolución” es la expresión del desarrollo de la enfermedad en función del desarrollo del material vegetal. Por ello, es necesario cuando se llevan a cabo las evaluaciones, tomar en cuenta el crecimiento vegetativo de la planta (emisión foliar) tanto como los síntomas (estadios) de la enfermedad.
Para iniciar la toma de datos, al momento de la primera lectura las plantas deberán tener un mínimo de ocho (8) hojas, preferiblemente 10, y deberán corresponder a 10 plantas con un desarrollo normal y uniforme, debidamente distribuidas dentro de la parcela de observación.
En esta primera lectura, el número total de hojas que tenga la planta, se marca en la base de la vena central de la hoja 1, la cual es aquella completamente abierta después del cigarro o candela.
Semanalmente, la hoja 1 será marcada con el número progresivo que corresponda con la emisión foliar total a ese momento (10, 11,12, etc).
Esa información es anotada para cada planta respectiva en la columna EFA del formulario para datos de campo (ver ejemplo). Además del número total de hojas, deberá observarse el estado de desarrollo del cigarro o candela, el cual se anotará en el formulario como fracción decimal del total de hojas emitidas a la observación.
Esta fracción decimal que será correspondiente a cada estado de desarrollo del cigarro o candela, se señala en la figura 1.
-Figura estados cigarros-
OBSERVACIÓN DE LA ENFERMEDAD Y CÁLCULO DEL ESTADO DE EVOLUCION.
Como se señaló anteriormente, en forma semanal deberán evaluarse las mismas plantas y en cada oportunidad, siempre las hojas II, III, y IV.
El fundamento de esta norma es que:
• Las hojas nuevas son generalmente, las que se infectan primero.
• La metodología trata de intervenir sobre la enfermedad en sus etapas más iniciales de desarrollo.
• Los síntomas sobre una misma hoja podrán, eventualmente ser observados por más de una semana y con ello, como han evolucionado.
Para determinar la presencia de los diferentes estadios, la observación o búsqueda se inicia por el envés del semilimbo izquierdo en su parte apical ya que por ser esta la primera parte de la hoja que se expone al desenrollarse el cigarro o candela, es el área que primero se inocula con la enfermedad.
A partir de esta zona se observa el resto de la hoja para detectar el estado más avanzado de la enfermedad así como un estimado del número de síntomas presente (ver estadios).
Estadío de la Sigatoka Negra
Esta información es la que se lleva al formulario para efecto de los cálculos respectivos, anotándola en las columnas correspondientes a cada hoja (rango de la hoja). Para cada una se anota únicamente un estado, el más alto y se agrega una calificación que será+(más) cuando se estima que su densidad es superior a 50 síntomas o-(menos) cuando sea inferior a 50.
En las plantaciones bananeras sometidas a combate químico y por esta metodología es muy difícil, encontrar estadios superior a 2-. Solamente en casos muy críticos, probablemente influenciados por focos calientes, se encontrarán casos de 2+.
Normalmente, los síntomas controlados no deben tomarse en cuenta durante la toma de datos, sin embargo, a veces es difícil diferenciar estos de los síntomas vivos. En caso de incertidumbre, es preferible no tomar en consideración la misma y anotar los síntomas que se encuentren.
Aunque no forma parte de la metodología ni de los cálculos para determinar el Estado de Evolución, puede observarse y anotarse también, la información correspondiente a la hoja más joven enferma (HMJE) y hoja más joven necrosada (HMSN), lo cual da una idea rápida del estado fitosanitario de la plantación con respecto a Sigatoka Negra.
A partir de estas observaciones se procederá a los cálculos de la siguiente forma.
En la primera evaluación, por no poder obtenerse el dato de ritmo de emisión foliar, ya que no se tiene el dato de emisión foliar pasada (EFP), tampoco se podrá obtener el dato del Estado de Evaluación. Lo que en esta oportunidad de logrará tener es la suma bruta (SB).
En la segunda toma de datos, así como en las siguientes, se podrá calcular el Ritmo de Emisión Foliar (REF) para cada planta, incorporando y restando de los datos de la semana actual (EFA- Emisión Foliar Actual), el dato de emisión foliar obtenido para la misma planta, la semana anterior (EFP= Emisión Foliar Pasada).
REF=EFA-EFP
Sumando el REF para cada planta, y dividiendo esta sumatoria (S REF) entre el número de días (N) que transcurrieron entre las dos observaciones, se obtiene el dato de Ritmo de Emisión Foliar Presente (REFi) para el lote de plantas en observación.
REFi= SREF
N
A continuación debe generarse la información denominada Corrección de Candela (CC). Esta se obtiene de multiplicar en cada planta, el valor asignado a su estado de cigarro o
candela por el número de hojas (II; III y IV) encontradas con síntomas de la enfermedad.
Por ejemplo, si en la planta A5, el estado de candela correspondió a 4, las 3 hojas observadas tenían la enfermedad, entonces CC=4x3=12.
A partir de los datos de CC, se obtiene el Coeficiente de Evolución (CE). Este se logra multiplicando el resultado de la sumatoria de CC para todas las plantas por 2, el cual es un factor preestablecido.
CE=S CC x 2
Para finalizar con la información necesaria vinculada al desarrollo de la planta (desarrollo foliar), solo queda obtener el dato del Ritmo de Emisión Foliar Ponderado (REFp), el que es tan solo el prometido de la suma del Ritmo de Emisión Foliar presente.
REFp = REF + REFi
2
La información del desarrollo de la planta (emisión foliar), es requerida para combinarla con los factores sintomatológicos expresados en la planta, lo cual conduce a obtener el Estado de Evolución (EE) de la enfermedad y que llevado a una gráfica, representa el comportamiento evolutivo permanente de la enfermedad en la plantación.
Este otro proceso se inicia con el cálculo de la Suma Bruta (SB), para ello, es necesario sumar la cantidad de hojas de igual numeración que en todas las 10 plantas evaluadas presentaron un mismo estadio (columnas correspondientes en el formulario a número de hojas dañadas); 5 hojas III con el estadio 1+, por ejemplo.
La suma del producto de la multiplicación de estos datos, por los Coeficientes de Severidad; señalados a continuación para cada hoja y cada estadio, da como resultado la Suma Bruta (SB).
Cuadro 2.
Coeficientes de Severidad para el cálculo de Suma Bruta.
Estadio Hoja
II III IV
1- 60 40 20
1+ 80 60 40
2- 100 80 60
2+ 120 100 80
3- 140 120 100
3+ 160 140 120
Como ejemplo, en una plantación dada, se encuentra que en la parcela de observación se encuentra el estadio 1- en la hoja II de dos plantas, en la hoja III de dos plantas y la hoja de IV de dos plantas.
El estadio 1+ se encuentra en la hoja III de una planta y en la hoja IV de dos plantas. El estadio 2- se encuentra en la hoja III de dos plantas mientras que el estadio 2+ se encuentra en la hoja IV de 3 plantas, información que se configura y calcula en el Cuadro 3.
Cuadro 3.
Número de Hojas Hojas Dañadas
Estadios Dañadas por Coeficiente
II III IV II III IV
1- 2 2 2 120 80 40
1+ 1 2 60 80
2- 2 160
2+ 3 130_______
Para continuar deberá calcularse la Suma de Evolución, la cual se obtiene al sustraer el Coeficiente de Evolución (ya indicado anteriormente como se calcula) de la Suma Bruta.
SEV =SB – CE
Este dato (SEV) se multiplica por el Ritmo de Emisión Foliar Ponderado y da como resultado el Estado de Evolución (EE) de la enfermedad para esa semana.
EE =SEV x REFi
Esta cifra, llevada a una gráfica es lo que permitirá según la tendencia o pendiente de la misma entre dos o más semanas, definir cuando hacer una aplicación o tratamiento funguicida.
Interpretación de los Resultados
El factor más importante que permite tomar la decisión de cuando aplicar, no es la cantidad de infección que se encuentra en las plantas, sino la evolución de la enfermedad, lo cual se refleja en la curva de una gráfica.
No existe, en principio, un umbral crítico. Solamente la experiencia podrá ir marcando algunos niveles de especial consideración que se definirán para los diferentes sectores.
Es lógico sí, que a más bajo nivel se pueda mantener el estado de evolución, mejor sanidad tendrá la plantación y consecuentemente, menos aplicaciones o tratamientos fungicidas. Esto se logra solamente haciendo las aplicaciones en la forma más oportuna posible.
EVALUACION DEL ESTADO DE INFECCIÓN
Es necesario tener una idea clara y precisa del estado sanitario de la finca, para prevenir daños severos al cultivo y su producción. Por esta razón se deben hacer evaluaciones periódicas (semanales o quincenales) sobre la incidencia y severidad de la Sigatoka Negra en cada finca.
A continuación se presenta la metodología de Stover modificada, para la evaluación de incidencia y severidad de la enfermedad, la cual nos permitirá estar debidamente edificados sobre el estado fitosanitario de la plantación.
METODOLOGÍA DE STOVER MODIFICADA POR GAUHL
La evaluación de incidencia y severidad por medio de la Metodología de Stover modificada, permite obtener información bastante detallada de la situación sanitaria de la plantación.
La figura 1 muestra los seis grados que incluye la escala de Stover modificada por Gauhl (1989).
El sistema consiste en una estimación visual del área foliar afectada en todas las hojas de plantas próximas a floración, sin necesidad de bajar la hoja.
Para esta evaluación se toman en cuenta todas las hojas presentes excepto la hoja candela, y las hojas agobiadas. La hoja más cercana a hoja candela se considera la hoja No.1
FIGURA 1. Escala de Stover modificada por Gauhl (1989).
. El conteo se facilita considerando la distribución en espiral (pares e impares) de derecha a izquierda a partir de las hojas 1 y 2 (figura 2), contando hacia abajo. Para determinar el área foliar afectada debe estimarse visualmente el área total cubierta por todos los síntomas de la enfermedad en cada hoja y calcular el porcentaje de la hoja cubierto por los síntomas. Para esto es necesario contar con un patrón o modelo que divide la hoja en proporciones porcentuales, como se mostró en la Figura 1.
Se presenta a continuación un ejemplo de la hoja de evaluación, (cuadro 1), así como de los cálculos a realizar para la obtención de las variables generadas por este método.
CUADRO 1. Ejemplo del cálculo del número de hojas por plantas (H/P).
NUMERO O POSICION DE LA HOJA
Planta 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 H/P
1 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 2 2 12
2 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 2 12
3 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 2 13
4 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 2 14
5 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 2 2 13
total 64
promedio 12.8
El numero en cada casilla indica el grado de infección que posee cada hoja con base en la escala de 0 a6 de acuerdo con la figura 1.
Para la obtención del número de hojas por planta se contabiliza el total de hojas y se divide por el número de plantas evaluadas (Cuadro 1). El número de hoja por planta se extrae de la última hoja que está indicada (coloreada) en la fórmula de evaluación.
La hoja más joven enferma (HMJE) es también un promedio de las hojas más jóvenes (coloreadas) que muestran síntomas visibles de la enfermedad. (Cuadro 2).
La HMJE da una indicación del progreso de la enfermedad. En otras palabras, cuanto más joven es la hoja con más síntomas, mayor es la incidencia de la enfermedad, y se podría decir que también la severidad.
CUADRO 2. Cálculo de la hoja más joven enferma (HMJE).
NUMERO O POSICION DE LA HOJA
Planta 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 H/P HMJE
1 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 2 2 9
2 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 2 11
3 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 2 13
4 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 2 12
5 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 2 2 10
total 55
promedio 11
Finalmente, para la obtención del porcentaje de hojas infectadas por grado, se cuenta el número de hojas en cada grado, se divide entre el número total de hojas y se multiplica por 100 (Cuadro 3).
El porcentaje total de hojas infectadas se obtiene de sumar el valor de todos los grados, del primero al sexto.
CUADRO 3. Cálculo del porcentaje de hojas infectadas (% H.J.)
NUMERO O POSICION DE LA HOJA
Planta 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 H/P HMJE 0 1 2 3 4 5 6
1 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 2 2 8 2 2
2 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 2 10 1 1
3 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 2 12 0 1
4 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 2 11 2 1
5 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 2 2 9 2 2
total 50 7 7
promedio 78 11 11
EJEMPLO: Porcentaje de hojas con grado 1:
Planta 1: 2 hojas
Planta 2: 1 hoja
Planta 3: 0 hojas
Planta 4: 2 hojas
Planta 5: 2 hojas
TOTAL 7 hojas con grado 1
TOTAL HOJAS evaluadas: 64
% HOJAS CON GRADO 1 = 7 x 100 =11.0
64
TOTAL HOJAS INFECTADAS = SUMA % HOJAS EN CADA GRADO (DEL 1 A 6) = 11 + 11 + 0 + 0 + 0 + 0 = 22
No obstante, este porcentaje total de hojas infectadas subestima la severidad de la enfermedad y es por ello que el uso de un promedio ponderado de infección (PPI) ha sido sugerido para obtener un valor más preciso. Su cálculo se obtiene de multiplicar el porcentaje de hojas de cada grado por el correspondiente valor del grado en la escala de Stover modificada. Cada resultado se suma y el total se divide entre 100.
EJEMPLO: Promedio Ponderado de Infección (PPI)
SUMA de (% Hojas en cada grado x grado respectivo)
PPI = 100
(11 x 1) + (11 x 2) +........+ (0 x 6)
PPI = 100
PPI = 0.33
PRODUCTORAS R.D.
INTRODUCCIÓN
En el desarrollo y combate de la Sigatoca Negra en banano como en plátano, se presentan dos elementos de relación muy estrecha.
El primero de ellos es la característica vegetativa de la planta de presentar un ritmo de emisión foliar constante, lo cual produce que permanentemente este exponiendo nuevos tejidos a la posible inoculación del patógeno.
El otro factor se refiere a las condiciones de la mayor parte de las regiones productoras de banano y plátano de América Latina, que presentan característica de temperatura y humedad muy favorables a la biología del hongo. Se exceptúan las zonas altas plataneras en donde se cultiva, de forma particular, en asocio con el café o en algunas regiones de marcada época seca pero en las que se práctica el riego, con lo cual se tienden a crear ciertas condiciones que puedan resultar favorables a la biología del hongo.
Estas características, unidas a la acción de los productos funguicidas han provocado cierta evaluación en las estrategias de combate de la Sigatoka Negra, dentro de las cuales, el sistema de preaviso ha mostrado una alta eficiencia, disminución de costos y menor contaminación del medio ambiente.
La metodología del preaviso para el combate de esta enfermedad, se fundamenta en el análisis de los descriptores
biológicos y climáticos de forma tal que las aplicaciones de funguicidas se puedan efectuar en el momento apenas inicial
de desarrollo de la infección y cuando los parámetros climáticos le resultan favorables al hongo.
Con esta intervención oportuna se propicia, por reversión del ataque, un espaciamiento mayor entre los ciclos de tratamiento, niveles más bajos de enfermedad y consecuentemente plantaciones más sanas que puedan expresar mejor su potencial productivo.
Como preaviso para el combate de la Sigatoka Negra se refiere a dos sistemas: el preaviso biológico y el preaviso bioclimático. En esta ocasión trataremos únicamente el preaviso biológico, ya que para el preaviso bioclimático se requiere de ciertas condiciones, con las cuales aún no contamos.
PREAVISO BIOLÓGICO
Esta metodología es independiente del preaviso bioclimático.
En las áreas donde se inicia el desarrollo del preaviso, es el primer paso y no será hasta años más tarde que se pueda combinar con los estudios climatológicos para establecer el preaviso bioclimático.
El sistema de preaviso biológico se fundamenta en el análisis de descriptores biológicos (evaluación de la enfermedad en relación con la planta, los cuales permiten concluir en el Estado de Evolución).
Para ello, se llevan a cabo evaluaciones semanales de forma tal que la aparición de los primeros síntomas de la enfermedad sobre las hojas jóvenes (II, III, y IV) permiten determinar de forma constante y “contable” el desarrollo de la enfermedad.
Los instrumentos básicos de este sistema lo constituyen la parcela de observación y la curva del Estado de Evolución, la cual refleja el resultado de las observaciones en el campo.
PARCELAS DE OBSERVACIÓN
Para poder “medir” el desarrollo constante de la enfermedad, es necesario hacer las observaciones semanalmente sobre las mismas plantas hasta que su altura permita la observación sobre las hojas II, III y IV o como máximo hasta la emisión de la inflorescencia (Parición).
No existen reglas en cuanto a la densidad de parcelas que se necesitan en un área determinada. Ello depende de la homogeneidad de las condiciones ambientales en las zonas bananeras, bajo la premisa de que diferentes fincas (particularmente en zonas donde existan fincas pequeñas) tengan un manejo similar.
Para establecer la parcela de observación en plantaciones adultas, deberán sembrarse lotes de 40 plantas dentro de las cuales se evaluarán 10 únicamente.
Debe evitarse la ubicación de parcelas cerca de instalaciones como casas, plantas empacadoras, tendidos eléctricos, carreteras, etc., o donde se encuentren obstáculos al vuelo del avión que no puedan ser eliminados.
En fincas con siembras nuevas, las 10 plantas a evaluar pueden ser ubicadas con una distribución más amplia, debiéndose tener presente que las mismas deberán ser localizadas fácilmente por el encargado de efectuar las lecturas.
Ya sea en parcelas establecidas o plantas seleccionadas dentro de siembras nuevas, estas deberán ser identificadas individualmente, para lo cual se recomienda el empleo alfa numérico. En esta señalización la letra corresponde a la línea o hilera de plantas y el número a la posición de la planta en la hilera.
Para facilidad en la ubicación de las plantas a observar, se deberá rotular al inicio de la hilera con la letra que le corresponde y en las plantas, además de colocar una tarjeta con la identificación alfa numérica, conviene pintar en el pseudotallo, un anillo que pueda ser visible a distancia.
Cuando no se pueda sembrar nuevos lotes (40 plantas) para las parcelas de observación, procederá a elegir los hijos con 10 hojas desarrolladas de una parcela en producción y establecer con estas la parcela de observación.
REPOSICIÓN DE PARCELAS
Debido a la imperiosa necesidad de una información constante debe preverse la disponibilidad de las plantas en las que se deberán continuar las evaluaciones, una vez lleguen a la emisión de inflorescencia las que están siendo evaluadas.
Para ello, se deberán establecer las parcelas de reemplazo con suficiente anticipación a dicho momento. Esta anticipación depende del material que se esté empleando, según se trate de rizomas o plántulas provenientes de viveros (cultivo de tejidos o rebrotes), de la época en que se establezcan y las condiciones climáticas.
Generalmente el tiempo requerido para establecer la parcela de reemplazo, es de aproximadamente dos (2) meses antes que la que se está evaluando llegue a parición.
Es importante tener presente que la lectura al momento de abandonar una parcela deberá coincidir con la segunda lectura en la parcela de reemplazo, lo cual significa que en una semana dada, se llevará a cabo la lectura en las dos parcelas pero en la forma indicada, ya que de lo contrario, se pueden presentar desfases en la información y problemas con los resultados que se obtienen.
En las zonas productoras de banano que presentan un período seco prolongado y no exista riego, conviene evitar el
establecer parcelas durante el mismo. En estos casos, las
mismas deberán establecerse a la salida de la estación lluviosa.
Significan un problema las parcelas de reemplazo? En realidad el único inconveniente que presenta esta labor, es la renuencia del productor a sacrificar las plantas que deberán dar lugar a las parcelas de reemplazo. Para tal efecto, es necesario que el mismo tenga una clara conciencia de los
beneficios que se derivarán de la aplicación de la aplicación de este sistema, ya que el sacrificar una cuantas plantas, será ampliamente compensado con la economía de ciclos de fumigación en toda la finca o un área dada y además de que se tendrá una mejor condición sanitaria de la plantación y todos los beneficios adicionales que se derivarán de ello.
Existe una opción al establecimiento de parcelas de reemplazo, la cual es continuar las observaciones en los hijos.
Para ello deberán tomarse en cuenta algunas consideraciones como las siguientes:
• La modalidad podría funcionar en cultivares de bajo porte como el Gran Enano, ya que otros de parte más alto como el Valery, los hijos llagan a ser muy altos antes de que desarrollen sus hojas funcionales.
• El comportamiento del estado de evolución en hijos difiere del que se observa en las plantillas, aún cuando la tendencia resulta ser similar. La amplitud de la curva que representa la evaluación de la enfermedad difiere en ambos casos, lo que podría ocasionar dificultades de interpretación.
• En caso que se decida trabajar con hijos, conviene llevar a cabo simultáneamente por un período de tiempo dado, las evaluaciones respectivas en ambos tipos de material con el propósito de que el personal responsable de la interpretación de resultados y recomendaciones en cada uno de los materiales respecto a la enfermedad en sí.
METODOLOGÍA DE EVALUACIÓN
El “Estado de Evolución” es la expresión del desarrollo de la enfermedad en función del desarrollo del material vegetal. Por ello, es necesario cuando se llevan a cabo las evaluaciones, tomar en cuenta el crecimiento vegetativo de la planta (emisión foliar) tanto como los síntomas (estadios) de la enfermedad.
Para iniciar la toma de datos, al momento de la primera lectura las plantas deberán tener un mínimo de ocho (8) hojas, preferiblemente 10, y deberán corresponder a 10 plantas con un desarrollo normal y uniforme, debidamente distribuidas dentro de la parcela de observación.
En esta primera lectura, el número total de hojas que tenga la planta, se marca en la base de la vena central de la hoja 1, la cual es aquella completamente abierta después del cigarro o candela.
Semanalmente, la hoja 1 será marcada con el número progresivo que corresponda con la emisión foliar total a ese momento (10, 11,12, etc).
Esa información es anotada para cada planta respectiva en la columna EFA del formulario para datos de campo (ver ejemplo). Además del número total de hojas, deberá observarse el estado de desarrollo del cigarro o candela, el cual se anotará en el formulario como fracción decimal del total de hojas emitidas a la observación.
Esta fracción decimal que será correspondiente a cada estado de desarrollo del cigarro o candela, se señala en la figura 1.
-Figura estados cigarros-
OBSERVACIÓN DE LA ENFERMEDAD Y CÁLCULO DEL ESTADO DE EVOLUCION.
Como se señaló anteriormente, en forma semanal deberán evaluarse las mismas plantas y en cada oportunidad, siempre las hojas II, III, y IV.
El fundamento de esta norma es que:
• Las hojas nuevas son generalmente, las que se infectan primero.
• La metodología trata de intervenir sobre la enfermedad en sus etapas más iniciales de desarrollo.
• Los síntomas sobre una misma hoja podrán, eventualmente ser observados por más de una semana y con ello, como han evolucionado.
Para determinar la presencia de los diferentes estadios, la observación o búsqueda se inicia por el envés del semilimbo izquierdo en su parte apical ya que por ser esta la primera parte de la hoja que se expone al desenrollarse el cigarro o candela, es el área que primero se inocula con la enfermedad.
A partir de esta zona se observa el resto de la hoja para detectar el estado más avanzado de la enfermedad así como un estimado del número de síntomas presente (ver estadios).
Estadío de la Sigatoka Negra
Esta información es la que se lleva al formulario para efecto de los cálculos respectivos, anotándola en las columnas correspondientes a cada hoja (rango de la hoja). Para cada una se anota únicamente un estado, el más alto y se agrega una calificación que será+(más) cuando se estima que su densidad es superior a 50 síntomas o-(menos) cuando sea inferior a 50.
En las plantaciones bananeras sometidas a combate químico y por esta metodología es muy difícil, encontrar estadios superior a 2-. Solamente en casos muy críticos, probablemente influenciados por focos calientes, se encontrarán casos de 2+.
Normalmente, los síntomas controlados no deben tomarse en cuenta durante la toma de datos, sin embargo, a veces es difícil diferenciar estos de los síntomas vivos. En caso de incertidumbre, es preferible no tomar en consideración la misma y anotar los síntomas que se encuentren.
Aunque no forma parte de la metodología ni de los cálculos para determinar el Estado de Evolución, puede observarse y anotarse también, la información correspondiente a la hoja más joven enferma (HMJE) y hoja más joven necrosada (HMSN), lo cual da una idea rápida del estado fitosanitario de la plantación con respecto a Sigatoka Negra.
A partir de estas observaciones se procederá a los cálculos de la siguiente forma.
En la primera evaluación, por no poder obtenerse el dato de ritmo de emisión foliar, ya que no se tiene el dato de emisión foliar pasada (EFP), tampoco se podrá obtener el dato del Estado de Evaluación. Lo que en esta oportunidad de logrará tener es la suma bruta (SB).
En la segunda toma de datos, así como en las siguientes, se podrá calcular el Ritmo de Emisión Foliar (REF) para cada planta, incorporando y restando de los datos de la semana actual (EFA- Emisión Foliar Actual), el dato de emisión foliar obtenido para la misma planta, la semana anterior (EFP= Emisión Foliar Pasada).
REF=EFA-EFP
Sumando el REF para cada planta, y dividiendo esta sumatoria (S REF) entre el número de días (N) que transcurrieron entre las dos observaciones, se obtiene el dato de Ritmo de Emisión Foliar Presente (REFi) para el lote de plantas en observación.
REFi= SREF
N
A continuación debe generarse la información denominada Corrección de Candela (CC). Esta se obtiene de multiplicar en cada planta, el valor asignado a su estado de cigarro o
candela por el número de hojas (II; III y IV) encontradas con síntomas de la enfermedad.
Por ejemplo, si en la planta A5, el estado de candela correspondió a 4, las 3 hojas observadas tenían la enfermedad, entonces CC=4x3=12.
A partir de los datos de CC, se obtiene el Coeficiente de Evolución (CE). Este se logra multiplicando el resultado de la sumatoria de CC para todas las plantas por 2, el cual es un factor preestablecido.
CE=S CC x 2
Para finalizar con la información necesaria vinculada al desarrollo de la planta (desarrollo foliar), solo queda obtener el dato del Ritmo de Emisión Foliar Ponderado (REFp), el que es tan solo el prometido de la suma del Ritmo de Emisión Foliar presente.
REFp = REF + REFi
2
La información del desarrollo de la planta (emisión foliar), es requerida para combinarla con los factores sintomatológicos expresados en la planta, lo cual conduce a obtener el Estado de Evolución (EE) de la enfermedad y que llevado a una gráfica, representa el comportamiento evolutivo permanente de la enfermedad en la plantación.
Este otro proceso se inicia con el cálculo de la Suma Bruta (SB), para ello, es necesario sumar la cantidad de hojas de igual numeración que en todas las 10 plantas evaluadas presentaron un mismo estadio (columnas correspondientes en el formulario a número de hojas dañadas); 5 hojas III con el estadio 1+, por ejemplo.
La suma del producto de la multiplicación de estos datos, por los Coeficientes de Severidad; señalados a continuación para cada hoja y cada estadio, da como resultado la Suma Bruta (SB).
Cuadro 2.
Coeficientes de Severidad para el cálculo de Suma Bruta.
Estadio Hoja
II III IV
1- 60 40 20
1+ 80 60 40
2- 100 80 60
2+ 120 100 80
3- 140 120 100
3+ 160 140 120
Como ejemplo, en una plantación dada, se encuentra que en la parcela de observación se encuentra el estadio 1- en la hoja II de dos plantas, en la hoja III de dos plantas y la hoja de IV de dos plantas.
El estadio 1+ se encuentra en la hoja III de una planta y en la hoja IV de dos plantas. El estadio 2- se encuentra en la hoja III de dos plantas mientras que el estadio 2+ se encuentra en la hoja IV de 3 plantas, información que se configura y calcula en el Cuadro 3.
Cuadro 3.
Número de Hojas Hojas Dañadas
Estadios Dañadas por Coeficiente
II III IV II III IV
1- 2 2 2 120 80 40
1+ 1 2 60 80
2- 2 160
2+ 3 130_______
Para continuar deberá calcularse la Suma de Evolución, la cual se obtiene al sustraer el Coeficiente de Evolución (ya indicado anteriormente como se calcula) de la Suma Bruta.
SEV =SB – CE
Este dato (SEV) se multiplica por el Ritmo de Emisión Foliar Ponderado y da como resultado el Estado de Evolución (EE) de la enfermedad para esa semana.
EE =SEV x REFi
Esta cifra, llevada a una gráfica es lo que permitirá según la tendencia o pendiente de la misma entre dos o más semanas, definir cuando hacer una aplicación o tratamiento funguicida.
Interpretación de los Resultados
El factor más importante que permite tomar la decisión de cuando aplicar, no es la cantidad de infección que se encuentra en las plantas, sino la evolución de la enfermedad, lo cual se refleja en la curva de una gráfica.
No existe, en principio, un umbral crítico. Solamente la experiencia podrá ir marcando algunos niveles de especial consideración que se definirán para los diferentes sectores.
Es lógico sí, que a más bajo nivel se pueda mantener el estado de evolución, mejor sanidad tendrá la plantación y consecuentemente, menos aplicaciones o tratamientos fungicidas. Esto se logra solamente haciendo las aplicaciones en la forma más oportuna posible.
EVALUACION DEL ESTADO DE INFECCIÓN
Es necesario tener una idea clara y precisa del estado sanitario de la finca, para prevenir daños severos al cultivo y su producción. Por esta razón se deben hacer evaluaciones periódicas (semanales o quincenales) sobre la incidencia y severidad de la Sigatoka Negra en cada finca.
A continuación se presenta la metodología de Stover modificada, para la evaluación de incidencia y severidad de la enfermedad, la cual nos permitirá estar debidamente edificados sobre el estado fitosanitario de la plantación.
METODOLOGÍA DE STOVER MODIFICADA POR GAUHL
La evaluación de incidencia y severidad por medio de la Metodología de Stover modificada, permite obtener información bastante detallada de la situación sanitaria de la plantación.
La figura 1 muestra los seis grados que incluye la escala de Stover modificada por Gauhl (1989).
El sistema consiste en una estimación visual del área foliar afectada en todas las hojas de plantas próximas a floración, sin necesidad de bajar la hoja.
Para esta evaluación se toman en cuenta todas las hojas presentes excepto la hoja candela, y las hojas agobiadas. La hoja más cercana a hoja candela se considera la hoja No.1
FIGURA 1. Escala de Stover modificada por Gauhl (1989).
. El conteo se facilita considerando la distribución en espiral (pares e impares) de derecha a izquierda a partir de las hojas 1 y 2 (figura 2), contando hacia abajo. Para determinar el área foliar afectada debe estimarse visualmente el área total cubierta por todos los síntomas de la enfermedad en cada hoja y calcular el porcentaje de la hoja cubierto por los síntomas. Para esto es necesario contar con un patrón o modelo que divide la hoja en proporciones porcentuales, como se mostró en la Figura 1.
Se presenta a continuación un ejemplo de la hoja de evaluación, (cuadro 1), así como de los cálculos a realizar para la obtención de las variables generadas por este método.
CUADRO 1. Ejemplo del cálculo del número de hojas por plantas (H/P).
NUMERO O POSICION DE LA HOJA
Planta 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 H/P
1 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 2 2 12
2 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 2 12
3 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 2 13
4 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 2 14
5 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 2 2 13
total 64
promedio 12.8
El numero en cada casilla indica el grado de infección que posee cada hoja con base en la escala de 0 a6 de acuerdo con la figura 1.
Para la obtención del número de hojas por planta se contabiliza el total de hojas y se divide por el número de plantas evaluadas (Cuadro 1). El número de hoja por planta se extrae de la última hoja que está indicada (coloreada) en la fórmula de evaluación.
La hoja más joven enferma (HMJE) es también un promedio de las hojas más jóvenes (coloreadas) que muestran síntomas visibles de la enfermedad. (Cuadro 2).
La HMJE da una indicación del progreso de la enfermedad. En otras palabras, cuanto más joven es la hoja con más síntomas, mayor es la incidencia de la enfermedad, y se podría decir que también la severidad.
CUADRO 2. Cálculo de la hoja más joven enferma (HMJE).
NUMERO O POSICION DE LA HOJA
Planta 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 H/P HMJE
1 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 2 2 9
2 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 2 11
3 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 2 13
4 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 2 12
5 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 2 2 10
total 55
promedio 11
Finalmente, para la obtención del porcentaje de hojas infectadas por grado, se cuenta el número de hojas en cada grado, se divide entre el número total de hojas y se multiplica por 100 (Cuadro 3).
El porcentaje total de hojas infectadas se obtiene de sumar el valor de todos los grados, del primero al sexto.
CUADRO 3. Cálculo del porcentaje de hojas infectadas (% H.J.)
NUMERO O POSICION DE LA HOJA
Planta 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 H/P HMJE 0 1 2 3 4 5 6
1 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 2 2 8 2 2
2 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 2 10 1 1
3 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 2 12 0 1
4 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 2 11 2 1
5 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 2 2 9 2 2
total 50 7 7
promedio 78 11 11
EJEMPLO: Porcentaje de hojas con grado 1:
Planta 1: 2 hojas
Planta 2: 1 hoja
Planta 3: 0 hojas
Planta 4: 2 hojas
Planta 5: 2 hojas
TOTAL 7 hojas con grado 1
TOTAL HOJAS evaluadas: 64
% HOJAS CON GRADO 1 = 7 x 100 =11.0
64
TOTAL HOJAS INFECTADAS = SUMA % HOJAS EN CADA GRADO (DEL 1 A 6) = 11 + 11 + 0 + 0 + 0 + 0 = 22
No obstante, este porcentaje total de hojas infectadas subestima la severidad de la enfermedad y es por ello que el uso de un promedio ponderado de infección (PPI) ha sido sugerido para obtener un valor más preciso. Su cálculo se obtiene de multiplicar el porcentaje de hojas de cada grado por el correspondiente valor del grado en la escala de Stover modificada. Cada resultado se suma y el total se divide entre 100.
EJEMPLO: Promedio Ponderado de Infección (PPI)
SUMA de (% Hojas en cada grado x grado respectivo)
PPI = 100
(11 x 1) + (11 x 2) +........+ (0 x 6)
PPI = 100
PPI = 0.33
viernes, 10 de abril de 2009
MOSCAS DE FRUTAS R.D.
MOSCAS DE FRUTAS DE LA FAMILIA TEPHRITIDAE
PRESENTES EN LA REPUBLICA DOMINICANA.
RESUMEN:
Las moscas de las frutas mas importantes detectadas en la República Dominicana fueron la mosca caribeña, Anastrepha suspensa, (Lowe), y la mosca oriental, Anastrepha obliqua, (Macquart), que producen daños significativos en los cultivos de Mango (Mangifera indica), L. y Guayaba (Psidium guajava, L.).
En orden de importancia, según su aparición fueron detectadas además Anastrepha dissimilis, (Stonei), y Anastrepha ocrecia, (Walker), de aparición ocasional, siendo A. dissimilis de mayor distribución que A. ocrecia. También fue localizado un espécimen de Anastrepha hambletoni, (Lima), y otro espécimen de Anastrepha stonei, (Steykal), que habían sido reportados de Brasil en el Continente Americano, (Norbon, 1989). Un (1) solo especimen no define su presencia en el país.
Las detecciones fueron realizadas en trampas tipo Mcphail, utilizando bórax + levadura disueltas en agua como atrayentes. Anastrepha stonei fue detectada frente a la compañía Roca en el Aeropuerto Internacional de las Américas y Anastrepha hambletoni en una trampa instalada en una plantación de cajuil, en Bani.
Otras trampas tipo Jackson fueron instaladas utilizando Trimedlure como atrayente para la detección de moscas del género Ceratitis y trampas tambien tipo Jackson, pero utilizando Methil Eugenol + Cuelure como atrayentes, para la detección de moscas del género Bractocera (Dacus). En estas trampas tipo Jackson no fueron detectadas moscas de importancia cuarentenaria para nuestro país, como son Ceratitis capitata, (Wiend); y Ceratitis rosa, así como Bractocera dorsalis, (Hendel), Bractocera cucurbitae, (Coquillett), Bractocera trioni, (Fraggatt), y Bractocera oleae, (Gmelin).
Las frutas utilizadas para buscar moscas de frutas en el laboratorio fueron Mango, Mangifera indica, (L), Guayaba, Psidium guajaba, (L.) Cajuil Anacardium occidentale, (L.) y Jobo, Spondias mombin, (L.) habiendose localizado solo las especies A. obliqua y A. suspensa.
INTRODUCCION
Se desconocía cuales eran las especies de moscas de frutas que existían en la República Dominicana, por tal razón, en el año 1987, la oficina Aphis, del Departamento de Agricultura de los Estados Unidos, (USDA), en coordinación con el Departamento de Sanidad Vegetal de la Secretaría de Estado de Agricultura, organizó un proyecto para la realización de un muestréo nacional para la determinación de las especies de moscas de frutas presentes en el país.
El muestreo fue iniciado en el año 1988 al 1991 definiéndose como Programa de Detección y Control de Moscas de las frutas, con el apoyo de Aphis-USDA y sus especialistas en entomología, con la colaboración activa del Museo Nacional de Historias Naturales,.
Otras evaluaciones realizadas en años siguientes, aunque menos completo que el trabajo que citamos, dieron como resultados las identificación cuatros especies mas importante citadas en nuestro trabajo, lo que indica que nuestra investigación fue mas completa.
MATERIALES Y METODOS
El Programa Nacional para la Detección de Moscas de las Frutas se inició en 1988 con el establecimiento de trampas, utilizando materiales donados por el Departamento de Agricultura de los Estados Unidos.
Fueron utilizadas trampas tipo Mcphail para la detección de moscas del género Anastrepha usando como atrayentes pelotillas de bórax + levadura disueltas en agua. Para la detección de moscas de frutas del género Ceratitis se utilizó la trampa tipo Jackson, con Trimedlure como atrayentes y para detectar la presencia de moscas del género Bractocera, se usó también la trampa tipo Jackson y como atrayente Methil Eugenol + Cuelure. Estos atrayentes fueron mezclados con el fin de separarlos en caso de que se detectaran algunas especies del género Bractocera, y atraer especies específicas de este género.
Trampa Mcphail para detección de moscas del género Anastrepha
Para el establecimiento del sistema, se visitaron las áreas donde se cultivan frutas, tanto dispersas como cultivos organizados, y seleccionar los hospederos que serían utilizados como soportes de las diferentes trampas, tomando en cuenta las características que señala el Manual Internacional de Moscas de Frutas.
La instalación del sistema de trampeó se inició en la región Este por ser la zona más importante en la producción de frutas para exportación, y estar situado el principal aeropuerto del país, además de otros dos aeropuertos para vuelos turísticos en esa oportunidad.
Las trampas fueron distribuidas tomando en cuenta las cinco millas cuadradas que cubre cada trampa, obviando las extensas zonas sembradas de caña, pastizales y bosques.
Luego se cubrió la región Sur completa, la cual producía en ese entonces musáceas en gran escala, melones y aguacates que eran exportados a mercados norteamericanos. En 1990 ya se había cubierto toda la región del Cibao (Zona Norte) que tenía muchas plantaciones organizadas, hospederas de moscas de las frutas.
Los principales árboles frutales utilizados como plantas soportes de las trampas fueron Mango (Mangifera indica), Guayaba, (Psidium guajaba), Toronja, (Citrus paradisi), Naranja Dulce, (Citrus sinensis), Naranja Agria, (Citrus aurantifolia), Lima, (Citrus limón), Chinola, (Passiflora edulis), Zapote, (Colocarpum zapote), Níspero, (Achras sapota), Cajuil, (Anacardium occidentalis), Guanábana, (Annona muricata), Carambola (Averroa bilimbi), Aguacate, (Persea americana).
Para obtener los mayores resultados posibles, se colectaron frutas a fin de determinar las especies de moscas que atacaban las frutas más importantes. Para tal objetivo fueron colocadas las frutas infectadas de moscas traídas del campo en jaulas de crianzas, desde donde se obtuvieron las pupas de las cuales emergieron los adultos.
Las trampas tipo Mcphail eran cebadas semanalmente, colectando las muestras para luego llevarlas al laboratorio con fines de determinación de la especie.
Las trampas tipo Jackson recibían servicios de mantenimiento quincenal, tanto de Detección de Nuevas plagas (DNP) que detectaban moscas del género Bractocera como las que detectaban moscas del género Ceratitis.
Trampa tipo Jackson para detección de moscas del género Bractocera.
Las determinaciones locales de moscas de frutas fueron luego confirmadas por los especialistas de USDA.
Finalizado el trampeó nacional, se continuó solo en la región Este, donde se inició un estudio utilizando trampas locales analizando varios colores y cinco (5) tipos de frutas como atrayentes combinándolas con los colores de las trampas.
Las trampas caseras que se evaluaron consistían en envases plásticos de color verde y amarillo de diferentes tamaños con capacidad de sostener 500 mll de agua + detergente. Contaban con un sostenedor de tres ganchos de alambre en el centro, otro alambre sujetaba las frutas suspendidas sobre solución de agua + detergente contenido en el fondo de los recipientes.
Trampa casera para detección de moscas de frutas
Fueron evaluadas las frutas de piña, mango, guineo, naranja y chinola utilizando un total de 20 trampas amarillas pequeñas, 20 trampas verdes y 20 amarillas grandes por cada especie de fruta, en cuatro (4) campos diferentes. Las trampas eran cebadas semanalmente, las moscas introducidas en frascos con alcohol al 70% para el diagnóstico. Las moscas eran procesadas, limpiando el ovipositor, montándolo al microscopio, y procediendo a identificarlas a través de este.
Las trampas estaban ubicadas en plantaciones de cítricos a razón de una (1) cada cinco (5) plantas, alternando los atrayentes. Cada trampa tenía una tarjeta de anotación con sus respectivos croquis del campo, ubicando con precisión las trampas.
Fueron evaluadas además la misma cantidad de trampas hechas con galones plásticos, con ventanas laterales, para facilitar la dispersión del atrayente, que fue colocado colgando en el centro y en el interior de la trampa – galón, conteniendo en el fondo agua + detergente. Los galones se pintaron de los colores verde, amarillo, verde negro y amarillo negro.
DISCUSIONES Y CONCLUSIONES
Debido a que en las trampas tipo Mcphail, para detección de Anastrepha ludens y A. serpentina así como en las trampas tipo Jackson que utilizaban Trimedlure como atrayente para la detección de moscas del género Ceratitis, y en las trampas Jackson que usa Methil Eugenol para detección de moscas del género Bractocera no fueron detectadas, moscas correspondientes a estos géneros de importancia cuarentenaria para nuestro país, determinamos que República Dominicana carecía de la presencia de moscas de importancia cuarentenaria.
En las trampas tipo Mcphail que utilizaron agua como disolvente de paletizado de bórax + levadura como atrayentes de moscas de frutas del género Anastrepha se capturaron los siguientes especimenes en las siguientes ubicaciones:
El muestreo finalizó en el año 1991, siendo continuado con un estudio en la región Este dando como resultado, que las moscas presentes en la zona, según este estudio, fueron: A. suspensa, A. obliqua, A. dissimilis y A. ocrecia. Estas fueron las mismas especies detectadas en el muestreo nacional y el mismo orden de importancia.
Otros estudios realizado por autoridades de la Secretaria de Estado de Agricultura y la Junta Agroempresarial Dominicana, en los años 2001-2002, dieron como resultados la presencia de estas mismas especies.
Este estudio que presentamos principalmente , además de los estudios siguientes, aunque de menos profundidad, y los que continua realizando el Departamento de Sanidad Vegetal de la Secretaria de Estado de Agricultura, han permitido que las autoridades fitosanitarias del Ministerio de Agricultura gobierno de Japón, en este año, permita las importaciones de frutas y vegetales procedentes de la Republica Dominicana, levantando una prohibición que data desde el año 1914, prohibición que se fundamentaba en la existencia en el país de especies de moscas de frutas de importancia cuarentenaria para ese país, demostrado lo contrario, los estudios desarrollados.
Cuadro No. 1: Datos estadísticos de las moscas de frutas atrapadas en trampas artificiales utilizando cinco frutas diferentes como atrayentes, durante el lapso Agosto/95 – Julio/96, en la región Este de la República Dominicana.
Atrayentes
Meses Piña
Moscas
Atrapadas Mango
Moscas
Atrapadas Guineo
Moscas
Atrapadas Chinola
Moscas
Atrapadas Naranja
Moscas
Atrapadas
Xi
N
X
S
CV%
Agosto/95 67 28 15 29 40 179 5 35.8 17.5 48.88
Sept. /95 98 126 36 101 113 474 5 94.8 31.02 32.72
Octubre/95 102 126 129 172 182 753 5 150.6 30.25 20.08
Nov./95 73 168 19 66 70 262 5 52.4 21.79 41.58
Diciembre/95 56 34 18 50 53 256 5 51.2 19.50 38.09
Enero/96 53 79 05 31 23 130 5 26.0 15.92 61.23
Febrero/96 45 29 02 43 30 149 5 29.8 15.35 51.51
Marzo/96 08 01 02 09 02 22 5 4.4 3.38 76.82
Abril/96 00 00 00 00 00 00 5 0.0 - -
Mayo/96 05 01 01 05 07 07 5 3.8 2.4 63.16
Junio/96 16 01 01 10 07 07 5 7.0 5.69 81.29
Julio/96 08 00 00 06 13 13 5 5.4 4.96 91.85
Xi 531 485 228 522 540
N 12 12 12 12 12
X 44.25 40.42 43.50 43.50 45.00
S 35.01 53.11 48.16 48.16 52.12
CV (%) 79.12 131.40 183.26 110.71 115.82
Interpretación de los datos del Cuadro No. 1
1.- Interpretación de los datos relativos a la cantidad de moscas atrapadas utilizando cinco tipos de atrayentes (piña, mango, guineo, chinola y naranja).
De acuerdo a los estadísticos X S y CV correspondientes a los atrayentes piña, mango, guineo, chinola y naranja se puede concluir, en términos descriptivos, que:
A* – Piña > A – Chinola > A – Naranja > A – Mango > A – Guineo,
Por cuanto el A – Piña es el que ha tenido una media aritmética (X) tan alta como los tres siguientes, ofrece la menor variabilidad de todos (79.12%), y si se parte de la premisa de que:
“El mejor atrayente será aquel que atraiga el mayor número de moscas y presente la menor variabilidad en capacidad de atracción, entonces el gradiente establecido entre los diferentes tipos de atrayentes puede ser aceptado como correcto, en términos probabilísticos”.
El atrayente que presentó el menor promedio (X) y la mayor variabilidad fue el A – Guineo, por lo que, puede ser considerado el atrayente menor efectivo. Sin embargo, tratándose de moscas de frutas de diferentes especies, podría darse el caso de que algunas de estas tenga preferencia, en particular, por el atrayente Guineo y A = atrayente en este caso, tal atrayente no debería descartarse. Pero, para esto sería necesario investigar al respecto.
El análisis de los estadísticos X, S y CV correspondientes a las moscas atrapadas por mes, durante el lapso Agosto/95 – Julio/96 permite establecer, también en términos descriptivos, que los meses de mayor incidencia de moscas de frutas en los patios de frutales son, en orden decreciente: Octubre, Septiembre, Diciembre, Noviembre y Agosto. Pues, son los que presentan los promedios mas altos y las desviaciones menores. En tanto que el mes de menor incidencia es el de Abril.
También se puede observar que la estación de mayor incidencia es el otoño y la de menor incidencia es la primavera.
A* = Atrayente
Cuadro No. 2 : Prueba conjunta o Prueba F
Atrayentes
Xi
Si
Fc
0.05 F4, 55
0.01 F4, 55
Piña
Chinola
Naranja
Mango
Guineo
*X G
S2 x
S 2 1
S 2 2
44.25
43.50
45.00
40.42
19.00
38.43
35.01
48.16
52.12
53.11
34.82
96.71844
2058.94
483.59
0.2349
3.68
2.- Interpretación de los datos del Cuadro No. 2
Como Fc* = 0.2349 < 0.05 F4,55 = 3.68 e incluso Fc= 0.2349 < 0.01 F4,55 = 2.54, esto implica que Ho se acepta y se rechaza Ha. Es decir, como Fc cae en el área de aceptación de la Ho (Hipótesis nula), la cual establece que no existen diferencias significativas, a los niveles estadístico de = 0.05 y = 0.01 entre las medias de los atrayentes, se rechaza que éstos sean diferentes a que exista uno cualquiera de ellos mejor que los demás.
*Fc= S2 2 , X5= Xi , Sx = (xi – x)2, S12= S12, S22= nS x 2
S12 n n
Atrayentes
ti c
t 0.05/2,10
tc = X i – X G
S x
Piña
Chinola
Naranja
Mango
Guineo
0.59
0.52
0.67
0.20
-1.98
2.228
3.- Interpretación de los datos del Cuadro No. 3
Los tci para cada uno de los atrayentes caen dentro del área de aceptación de la Ho; pues, tci ( - t ( 2, n – 2, t ( 2, n – 2) para un valor de 0.05, lo que implica que se acepta la Ho y se rechaza la Ha. Esto quiere decir, que en el nivel estadístico 0.05/2 no existen diferencias estadísticas entre los diversos atrayentes.
Sin embargo, al nivel de =0.1 para dos colas, se rechaza que el atrayente guineo sea estadísticamente igual a los demás. Veamos:
tc guineo = -1.98 ( -1.812, 1.812 )
Cuadro No. 4 : Datos estadísticos de las moscas de las frutas atrapadas en tres tipos de trampas, utilizando piña como atrayente, durante el lapso 8/95 – 7/96, en la región Este de la República Dominicana.
Tiempo en Meses
8/95
9/95
10/95
11-95
12-95
1/96
2/96
3/96
4/96
5/96
6/96
7/96
Xi
n
x
S
Cv
Verde
19
29
29
20
12
29
14
5
0
2
10
3
172
12
14.33
10.39
72.50%
Amarillo Peq.
23
38
37
32
21
19
30
3
0
3
0
4
210
12
17.50
14.22
81.26
Amarillo Gde.
25
31
36
21
23
5
1
0
0
0
6
1
149
12
12.42
13.12
105.64
Cuadro No. 5 : Datos estadísticos de las moscas de las frutas atrapadas en tres tipos de trampas, utilizando mango como atrayente, durante el lapso 8/95 – 7/96, en la región Este de la República Dominicana.
Tiempo en Meses
8/95
9/95
10/95
11/95
12-95
1/96
2/96
3/96
4/96
5/96
6/96
7/96
Xi
n
x
S
Cv
Verde
9
13
47
7
16
11
12
0
0
0
1
0
116
12
9.67
12.61
130.40
Amarillo Peq.
12
76
81
14
62
5
14
1
0
0
0
0
265
12
22.08
30.13
136.46
Amarillo Gde.
7
37
40
13
1
2
3
0
0
1
0
0
104
12
8.67
13.85
159.75
Cuadro No. 6 : Datos estadísticos de las moscas de las frutas atrapadas en tres tipos de trampas, utilizando guineo como atrayente, durante el lapso 8/95 – 7/96, en la región Este de la República Dominicana.
Tiempo en Meses
8/95
9/95
10/95
11/95
12-95
1/96
2/96
3/96
4/96
5/96
6/96
7/96
Xi
n
x
S
Cv
Verde
6
9
24
2
6
2
0
1
0
0
0
0
50
12
4.17
6.64
159.23
Amarillo Peq.
6
14
30
2
8
2
2
1
0
0
0
0
65
12
5.42
8.45
155.90
Amarillo Gde.
3
13
75
15
4
1
0
0
0
1
1
0
113
12
9.42
20.38
216.35
Cuadro No. 7 : Datos estadísticos de las moscas de las frutas atrapadas en tres tipos de trampas, utilizando chinola como atrayente, durante el lapso 8/95 – 7/96, en la región Este de la República Dominicana.
Tiempo en Meses
8/95
9/95
10/95
11/95
12-95
1/96
2/96
3/96
4/96
5/96
6/96
7/96
Xi
n
x
S
Cv
Verde
12
17
23
23
14
8
7
3
0
0
3
0
110
12
9.17
8.21
89.53%
Amarillo Peq.
5
59
105
33
19
14
15
5
0
3
2
3
263
12
21.92
29.84
136.13
Amarillo Gde.
11
35
44
10
17
9
21
1
0
2
5
3
158
12
13.17
13.39
101.67
Cuadro No. 8 : Datos estadísticos de las moscas de las frutas atrapadas en tres tipos de trampas, utilizando naranja como atrayente, durante el lapso 8/95 – 7/96, en la región Este de la República Dominicana.
Tiempo en Meses
8/95
9/95
10/95
11/95
12-95
1/96
2/96
3/96
4/96
5/96
6/96
7/96
Xi
n
x
S
Cv
Verde
7
52
31
24
9
6
12
2
0
2
0
1
146
12
12.17
15.23
125.14%
Amarillo Peq.
30
25
21
19
25
13
11
0
0
3
7
11
165
12
13.75
9.80
71.27
Amarillo Gde.
3
36
130
27
19
4
7
0
0
2
0
1
229
12
19.08
35.35
185.27
Cuadro No. 9 : Datos estadísticos de las moscas de las frutas atrapadas en tres tipos de trampas, utilizando cinco (5) frutas como atrayente, durante el lapso 8/95 – 7/96, en la región Este de la República Dominicana.
Tiempo en Meses
8/95
9/95
10/95
11/95
12-95
1/96
2/96
3/96
4/96
5/96
6/96
7/96
Xi
n
x
S
Cv
Verde
53
120
154
76
57
56
45
11
0
4
14
4
594
12
49.50
46.60
84.14%
Amarillo Peq.
76
212
274
100
135
53
72
10
0
9
9
18
968
12
80.67
83.92
104.03
Amarillo Gde.
50
142
325
86
64
21
32
1
0
6
12
5
744
12
62
89.13
143.76
XG 64.06
Sx2 246.06
S21 5,719.43
S 2 738.19
2
Fc 0.129
0.05 F2 ,33 19.50
0.01 F2 ,33 99.50
4.- Interpretación de los datos de los cuadros No. 4, 5, 6, 7 y 8.
El análisis de los estadísticos X, S y CV de los cuadros No. 4, 5, 6, 7 y 8, respecto de los tipos de trampas Verde, Amarillo – Pequeño y Amarillo Grande, permite concluir, en términos descriptivos, que:
1- Las trampas de color amarillo son las que han presentado los promedios mas altos:
1.1- Las trampas amarillo – pequeño, con los atrayentes:
Mango ( X= 22.08) > chinola ( X= 21.92) > piña ( X= 1
7.50)
1.2- Las trampas amarillo – grande, con los atrayentes:
Naranja ( X= 19.08 ) > guineo ( X= 9.42)
Aunque es oportuno señalar que las trampas de color verde son las que presentan en términos generales la menor variabilidad, en relación con la X, excepto en los casos de los atrayentes guineo ( CV = 155.90) y naranja ( CV = 71.27).
5- Interpretación de los datos estadísticos del cuadro No. 9
Dado que Fc = 0.129 < 0.05 Ft2 ,33 = 19.50, o mejor dicho, que Fc = 0.129 cae dentro del área de aceptación de la Ho (Hipótesis Nula), lo que implica rechazar la Ha (Hipótesis Alternativa), se concluye que no existen diferencias estadísticas significativas, nivel de = 5% ni al nivel de = 1 % (0.01 Ft2,33 = 99.50), entre las medias de los diferentes tipos de trampas.
Cuadro No. 10 : Prueba t
Trampas
Verde
Amarillo Peq.
Amarillo Gde.
Tci
-1.14
1.30
-0.16
t 0.05/2,10
2.228
Dado que t < (2, n – 2), se concluye que no existen diferencias entre los medios de las trampas, por lo que pueden ser considerados, en términos estadísticos, como similares.
BIBLIOGRAFIAS:
- Cheslavo A. Korytkowski, Adaptadas de Borrar, D. J.& R., E. White, 1970 A Field Guide to the insect of América North of Mexico. Horghton, Mifflin, Co. Boston, 404 p.p
- Cirio U. (ENEA, Waley), Economoponlos, A. (IAEA, coordinator), 1986, Fruit Flies Proceding of the recont, International Symposium, Edited by A. P. Economoponlos, is BN: 0-444-987976-3.
- FAO – OIRSA, 1987, Distribución Geográfica y Monitoreo de Poblaciones de Moscas del Mediterráneo en Centro América y Panamá. Informe al 31 de Diciembre del 1987.
- Montiel A.; Madueño C. 1995 Determinación del umbral de tratamiento para la mosca del olivo (Bractocera oleae, Gmel., Diptera: Tephritidae) en olivar de producción de aceite de Jaén. Boletín de Sanidad Vegetal, Plagas (1995) 21 (4) 589-566 [Es, en Aref].
- Nicanor J. Liquido and Roy T. Cunmingham, 1989, Ecological Considerations in Evadicating Exotic Fruit Fly Introductions, Guatemala. Abril 1989.
- Shelly, T. E. ; Whittier, T.S. ; Vellalobos, E. M. 1996, Trimedlure affects mating succes and mate attention in male Mediterranean fruit flies Entomologia Experimentali et applicata (1996) 78 (2) 181-185 [En, 30 ref.] Hawaiian Evolutionary Biology Program. University of Hawaii, Honolulu, HI 96822 USA.
Observación:
Este trabajo de investigación participaron técnico de
La SEA..
PRESENTES EN LA REPUBLICA DOMINICANA.
RESUMEN:
Las moscas de las frutas mas importantes detectadas en la República Dominicana fueron la mosca caribeña, Anastrepha suspensa, (Lowe), y la mosca oriental, Anastrepha obliqua, (Macquart), que producen daños significativos en los cultivos de Mango (Mangifera indica), L. y Guayaba (Psidium guajava, L.).
En orden de importancia, según su aparición fueron detectadas además Anastrepha dissimilis, (Stonei), y Anastrepha ocrecia, (Walker), de aparición ocasional, siendo A. dissimilis de mayor distribución que A. ocrecia. También fue localizado un espécimen de Anastrepha hambletoni, (Lima), y otro espécimen de Anastrepha stonei, (Steykal), que habían sido reportados de Brasil en el Continente Americano, (Norbon, 1989). Un (1) solo especimen no define su presencia en el país.
Las detecciones fueron realizadas en trampas tipo Mcphail, utilizando bórax + levadura disueltas en agua como atrayentes. Anastrepha stonei fue detectada frente a la compañía Roca en el Aeropuerto Internacional de las Américas y Anastrepha hambletoni en una trampa instalada en una plantación de cajuil, en Bani.
Otras trampas tipo Jackson fueron instaladas utilizando Trimedlure como atrayente para la detección de moscas del género Ceratitis y trampas tambien tipo Jackson, pero utilizando Methil Eugenol + Cuelure como atrayentes, para la detección de moscas del género Bractocera (Dacus). En estas trampas tipo Jackson no fueron detectadas moscas de importancia cuarentenaria para nuestro país, como son Ceratitis capitata, (Wiend); y Ceratitis rosa, así como Bractocera dorsalis, (Hendel), Bractocera cucurbitae, (Coquillett), Bractocera trioni, (Fraggatt), y Bractocera oleae, (Gmelin).
Las frutas utilizadas para buscar moscas de frutas en el laboratorio fueron Mango, Mangifera indica, (L), Guayaba, Psidium guajaba, (L.) Cajuil Anacardium occidentale, (L.) y Jobo, Spondias mombin, (L.) habiendose localizado solo las especies A. obliqua y A. suspensa.
INTRODUCCION
Se desconocía cuales eran las especies de moscas de frutas que existían en la República Dominicana, por tal razón, en el año 1987, la oficina Aphis, del Departamento de Agricultura de los Estados Unidos, (USDA), en coordinación con el Departamento de Sanidad Vegetal de la Secretaría de Estado de Agricultura, organizó un proyecto para la realización de un muestréo nacional para la determinación de las especies de moscas de frutas presentes en el país.
El muestreo fue iniciado en el año 1988 al 1991 definiéndose como Programa de Detección y Control de Moscas de las frutas, con el apoyo de Aphis-USDA y sus especialistas en entomología, con la colaboración activa del Museo Nacional de Historias Naturales,.
Otras evaluaciones realizadas en años siguientes, aunque menos completo que el trabajo que citamos, dieron como resultados las identificación cuatros especies mas importante citadas en nuestro trabajo, lo que indica que nuestra investigación fue mas completa.
MATERIALES Y METODOS
El Programa Nacional para la Detección de Moscas de las Frutas se inició en 1988 con el establecimiento de trampas, utilizando materiales donados por el Departamento de Agricultura de los Estados Unidos.
Fueron utilizadas trampas tipo Mcphail para la detección de moscas del género Anastrepha usando como atrayentes pelotillas de bórax + levadura disueltas en agua. Para la detección de moscas de frutas del género Ceratitis se utilizó la trampa tipo Jackson, con Trimedlure como atrayentes y para detectar la presencia de moscas del género Bractocera, se usó también la trampa tipo Jackson y como atrayente Methil Eugenol + Cuelure. Estos atrayentes fueron mezclados con el fin de separarlos en caso de que se detectaran algunas especies del género Bractocera, y atraer especies específicas de este género.
Trampa Mcphail para detección de moscas del género Anastrepha
Para el establecimiento del sistema, se visitaron las áreas donde se cultivan frutas, tanto dispersas como cultivos organizados, y seleccionar los hospederos que serían utilizados como soportes de las diferentes trampas, tomando en cuenta las características que señala el Manual Internacional de Moscas de Frutas.
La instalación del sistema de trampeó se inició en la región Este por ser la zona más importante en la producción de frutas para exportación, y estar situado el principal aeropuerto del país, además de otros dos aeropuertos para vuelos turísticos en esa oportunidad.
Las trampas fueron distribuidas tomando en cuenta las cinco millas cuadradas que cubre cada trampa, obviando las extensas zonas sembradas de caña, pastizales y bosques.
Luego se cubrió la región Sur completa, la cual producía en ese entonces musáceas en gran escala, melones y aguacates que eran exportados a mercados norteamericanos. En 1990 ya se había cubierto toda la región del Cibao (Zona Norte) que tenía muchas plantaciones organizadas, hospederas de moscas de las frutas.
Los principales árboles frutales utilizados como plantas soportes de las trampas fueron Mango (Mangifera indica), Guayaba, (Psidium guajaba), Toronja, (Citrus paradisi), Naranja Dulce, (Citrus sinensis), Naranja Agria, (Citrus aurantifolia), Lima, (Citrus limón), Chinola, (Passiflora edulis), Zapote, (Colocarpum zapote), Níspero, (Achras sapota), Cajuil, (Anacardium occidentalis), Guanábana, (Annona muricata), Carambola (Averroa bilimbi), Aguacate, (Persea americana).
Para obtener los mayores resultados posibles, se colectaron frutas a fin de determinar las especies de moscas que atacaban las frutas más importantes. Para tal objetivo fueron colocadas las frutas infectadas de moscas traídas del campo en jaulas de crianzas, desde donde se obtuvieron las pupas de las cuales emergieron los adultos.
Las trampas tipo Mcphail eran cebadas semanalmente, colectando las muestras para luego llevarlas al laboratorio con fines de determinación de la especie.
Las trampas tipo Jackson recibían servicios de mantenimiento quincenal, tanto de Detección de Nuevas plagas (DNP) que detectaban moscas del género Bractocera como las que detectaban moscas del género Ceratitis.
Trampa tipo Jackson para detección de moscas del género Bractocera.
Las determinaciones locales de moscas de frutas fueron luego confirmadas por los especialistas de USDA.
Finalizado el trampeó nacional, se continuó solo en la región Este, donde se inició un estudio utilizando trampas locales analizando varios colores y cinco (5) tipos de frutas como atrayentes combinándolas con los colores de las trampas.
Las trampas caseras que se evaluaron consistían en envases plásticos de color verde y amarillo de diferentes tamaños con capacidad de sostener 500 mll de agua + detergente. Contaban con un sostenedor de tres ganchos de alambre en el centro, otro alambre sujetaba las frutas suspendidas sobre solución de agua + detergente contenido en el fondo de los recipientes.
Trampa casera para detección de moscas de frutas
Fueron evaluadas las frutas de piña, mango, guineo, naranja y chinola utilizando un total de 20 trampas amarillas pequeñas, 20 trampas verdes y 20 amarillas grandes por cada especie de fruta, en cuatro (4) campos diferentes. Las trampas eran cebadas semanalmente, las moscas introducidas en frascos con alcohol al 70% para el diagnóstico. Las moscas eran procesadas, limpiando el ovipositor, montándolo al microscopio, y procediendo a identificarlas a través de este.
Las trampas estaban ubicadas en plantaciones de cítricos a razón de una (1) cada cinco (5) plantas, alternando los atrayentes. Cada trampa tenía una tarjeta de anotación con sus respectivos croquis del campo, ubicando con precisión las trampas.
Fueron evaluadas además la misma cantidad de trampas hechas con galones plásticos, con ventanas laterales, para facilitar la dispersión del atrayente, que fue colocado colgando en el centro y en el interior de la trampa – galón, conteniendo en el fondo agua + detergente. Los galones se pintaron de los colores verde, amarillo, verde negro y amarillo negro.
DISCUSIONES Y CONCLUSIONES
Debido a que en las trampas tipo Mcphail, para detección de Anastrepha ludens y A. serpentina así como en las trampas tipo Jackson que utilizaban Trimedlure como atrayente para la detección de moscas del género Ceratitis, y en las trampas Jackson que usa Methil Eugenol para detección de moscas del género Bractocera no fueron detectadas, moscas correspondientes a estos géneros de importancia cuarentenaria para nuestro país, determinamos que República Dominicana carecía de la presencia de moscas de importancia cuarentenaria.
En las trampas tipo Mcphail que utilizaron agua como disolvente de paletizado de bórax + levadura como atrayentes de moscas de frutas del género Anastrepha se capturaron los siguientes especimenes en las siguientes ubicaciones:
El muestreo finalizó en el año 1991, siendo continuado con un estudio en la región Este dando como resultado, que las moscas presentes en la zona, según este estudio, fueron: A. suspensa, A. obliqua, A. dissimilis y A. ocrecia. Estas fueron las mismas especies detectadas en el muestreo nacional y el mismo orden de importancia.
Otros estudios realizado por autoridades de la Secretaria de Estado de Agricultura y la Junta Agroempresarial Dominicana, en los años 2001-2002, dieron como resultados la presencia de estas mismas especies.
Este estudio que presentamos principalmente , además de los estudios siguientes, aunque de menos profundidad, y los que continua realizando el Departamento de Sanidad Vegetal de la Secretaria de Estado de Agricultura, han permitido que las autoridades fitosanitarias del Ministerio de Agricultura gobierno de Japón, en este año, permita las importaciones de frutas y vegetales procedentes de la Republica Dominicana, levantando una prohibición que data desde el año 1914, prohibición que se fundamentaba en la existencia en el país de especies de moscas de frutas de importancia cuarentenaria para ese país, demostrado lo contrario, los estudios desarrollados.
Cuadro No. 1: Datos estadísticos de las moscas de frutas atrapadas en trampas artificiales utilizando cinco frutas diferentes como atrayentes, durante el lapso Agosto/95 – Julio/96, en la región Este de la República Dominicana.
Atrayentes
Meses Piña
Moscas
Atrapadas Mango
Moscas
Atrapadas Guineo
Moscas
Atrapadas Chinola
Moscas
Atrapadas Naranja
Moscas
Atrapadas
Xi
N
X
S
CV%
Agosto/95 67 28 15 29 40 179 5 35.8 17.5 48.88
Sept. /95 98 126 36 101 113 474 5 94.8 31.02 32.72
Octubre/95 102 126 129 172 182 753 5 150.6 30.25 20.08
Nov./95 73 168 19 66 70 262 5 52.4 21.79 41.58
Diciembre/95 56 34 18 50 53 256 5 51.2 19.50 38.09
Enero/96 53 79 05 31 23 130 5 26.0 15.92 61.23
Febrero/96 45 29 02 43 30 149 5 29.8 15.35 51.51
Marzo/96 08 01 02 09 02 22 5 4.4 3.38 76.82
Abril/96 00 00 00 00 00 00 5 0.0 - -
Mayo/96 05 01 01 05 07 07 5 3.8 2.4 63.16
Junio/96 16 01 01 10 07 07 5 7.0 5.69 81.29
Julio/96 08 00 00 06 13 13 5 5.4 4.96 91.85
Xi 531 485 228 522 540
N 12 12 12 12 12
X 44.25 40.42 43.50 43.50 45.00
S 35.01 53.11 48.16 48.16 52.12
CV (%) 79.12 131.40 183.26 110.71 115.82
Interpretación de los datos del Cuadro No. 1
1.- Interpretación de los datos relativos a la cantidad de moscas atrapadas utilizando cinco tipos de atrayentes (piña, mango, guineo, chinola y naranja).
De acuerdo a los estadísticos X S y CV correspondientes a los atrayentes piña, mango, guineo, chinola y naranja se puede concluir, en términos descriptivos, que:
A* – Piña > A – Chinola > A – Naranja > A – Mango > A – Guineo,
Por cuanto el A – Piña es el que ha tenido una media aritmética (X) tan alta como los tres siguientes, ofrece la menor variabilidad de todos (79.12%), y si se parte de la premisa de que:
“El mejor atrayente será aquel que atraiga el mayor número de moscas y presente la menor variabilidad en capacidad de atracción, entonces el gradiente establecido entre los diferentes tipos de atrayentes puede ser aceptado como correcto, en términos probabilísticos”.
El atrayente que presentó el menor promedio (X) y la mayor variabilidad fue el A – Guineo, por lo que, puede ser considerado el atrayente menor efectivo. Sin embargo, tratándose de moscas de frutas de diferentes especies, podría darse el caso de que algunas de estas tenga preferencia, en particular, por el atrayente Guineo y A = atrayente en este caso, tal atrayente no debería descartarse. Pero, para esto sería necesario investigar al respecto.
El análisis de los estadísticos X, S y CV correspondientes a las moscas atrapadas por mes, durante el lapso Agosto/95 – Julio/96 permite establecer, también en términos descriptivos, que los meses de mayor incidencia de moscas de frutas en los patios de frutales son, en orden decreciente: Octubre, Septiembre, Diciembre, Noviembre y Agosto. Pues, son los que presentan los promedios mas altos y las desviaciones menores. En tanto que el mes de menor incidencia es el de Abril.
También se puede observar que la estación de mayor incidencia es el otoño y la de menor incidencia es la primavera.
A* = Atrayente
Cuadro No. 2 : Prueba conjunta o Prueba F
Atrayentes
Xi
Si
Fc
0.05 F4, 55
0.01 F4, 55
Piña
Chinola
Naranja
Mango
Guineo
*X G
S2 x
S 2 1
S 2 2
44.25
43.50
45.00
40.42
19.00
38.43
35.01
48.16
52.12
53.11
34.82
96.71844
2058.94
483.59
0.2349
3.68
2.- Interpretación de los datos del Cuadro No. 2
Como Fc* = 0.2349 < 0.05 F4,55 = 3.68 e incluso Fc= 0.2349 < 0.01 F4,55 = 2.54, esto implica que Ho se acepta y se rechaza Ha. Es decir, como Fc cae en el área de aceptación de la Ho (Hipótesis nula), la cual establece que no existen diferencias significativas, a los niveles estadístico de = 0.05 y = 0.01 entre las medias de los atrayentes, se rechaza que éstos sean diferentes a que exista uno cualquiera de ellos mejor que los demás.
*Fc= S2 2 , X5= Xi , Sx = (xi – x)2, S12= S12, S22= nS x 2
S12 n n
Atrayentes
ti c
t 0.05/2,10
tc = X i – X G
S x
Piña
Chinola
Naranja
Mango
Guineo
0.59
0.52
0.67
0.20
-1.98
2.228
3.- Interpretación de los datos del Cuadro No. 3
Los tci para cada uno de los atrayentes caen dentro del área de aceptación de la Ho; pues, tci ( - t ( 2, n – 2, t ( 2, n – 2) para un valor de 0.05, lo que implica que se acepta la Ho y se rechaza la Ha. Esto quiere decir, que en el nivel estadístico 0.05/2 no existen diferencias estadísticas entre los diversos atrayentes.
Sin embargo, al nivel de =0.1 para dos colas, se rechaza que el atrayente guineo sea estadísticamente igual a los demás. Veamos:
tc guineo = -1.98 ( -1.812, 1.812 )
Cuadro No. 4 : Datos estadísticos de las moscas de las frutas atrapadas en tres tipos de trampas, utilizando piña como atrayente, durante el lapso 8/95 – 7/96, en la región Este de la República Dominicana.
Tiempo en Meses
8/95
9/95
10/95
11-95
12-95
1/96
2/96
3/96
4/96
5/96
6/96
7/96
Xi
n
x
S
Cv
Verde
19
29
29
20
12
29
14
5
0
2
10
3
172
12
14.33
10.39
72.50%
Amarillo Peq.
23
38
37
32
21
19
30
3
0
3
0
4
210
12
17.50
14.22
81.26
Amarillo Gde.
25
31
36
21
23
5
1
0
0
0
6
1
149
12
12.42
13.12
105.64
Cuadro No. 5 : Datos estadísticos de las moscas de las frutas atrapadas en tres tipos de trampas, utilizando mango como atrayente, durante el lapso 8/95 – 7/96, en la región Este de la República Dominicana.
Tiempo en Meses
8/95
9/95
10/95
11/95
12-95
1/96
2/96
3/96
4/96
5/96
6/96
7/96
Xi
n
x
S
Cv
Verde
9
13
47
7
16
11
12
0
0
0
1
0
116
12
9.67
12.61
130.40
Amarillo Peq.
12
76
81
14
62
5
14
1
0
0
0
0
265
12
22.08
30.13
136.46
Amarillo Gde.
7
37
40
13
1
2
3
0
0
1
0
0
104
12
8.67
13.85
159.75
Cuadro No. 6 : Datos estadísticos de las moscas de las frutas atrapadas en tres tipos de trampas, utilizando guineo como atrayente, durante el lapso 8/95 – 7/96, en la región Este de la República Dominicana.
Tiempo en Meses
8/95
9/95
10/95
11/95
12-95
1/96
2/96
3/96
4/96
5/96
6/96
7/96
Xi
n
x
S
Cv
Verde
6
9
24
2
6
2
0
1
0
0
0
0
50
12
4.17
6.64
159.23
Amarillo Peq.
6
14
30
2
8
2
2
1
0
0
0
0
65
12
5.42
8.45
155.90
Amarillo Gde.
3
13
75
15
4
1
0
0
0
1
1
0
113
12
9.42
20.38
216.35
Cuadro No. 7 : Datos estadísticos de las moscas de las frutas atrapadas en tres tipos de trampas, utilizando chinola como atrayente, durante el lapso 8/95 – 7/96, en la región Este de la República Dominicana.
Tiempo en Meses
8/95
9/95
10/95
11/95
12-95
1/96
2/96
3/96
4/96
5/96
6/96
7/96
Xi
n
x
S
Cv
Verde
12
17
23
23
14
8
7
3
0
0
3
0
110
12
9.17
8.21
89.53%
Amarillo Peq.
5
59
105
33
19
14
15
5
0
3
2
3
263
12
21.92
29.84
136.13
Amarillo Gde.
11
35
44
10
17
9
21
1
0
2
5
3
158
12
13.17
13.39
101.67
Cuadro No. 8 : Datos estadísticos de las moscas de las frutas atrapadas en tres tipos de trampas, utilizando naranja como atrayente, durante el lapso 8/95 – 7/96, en la región Este de la República Dominicana.
Tiempo en Meses
8/95
9/95
10/95
11/95
12-95
1/96
2/96
3/96
4/96
5/96
6/96
7/96
Xi
n
x
S
Cv
Verde
7
52
31
24
9
6
12
2
0
2
0
1
146
12
12.17
15.23
125.14%
Amarillo Peq.
30
25
21
19
25
13
11
0
0
3
7
11
165
12
13.75
9.80
71.27
Amarillo Gde.
3
36
130
27
19
4
7
0
0
2
0
1
229
12
19.08
35.35
185.27
Cuadro No. 9 : Datos estadísticos de las moscas de las frutas atrapadas en tres tipos de trampas, utilizando cinco (5) frutas como atrayente, durante el lapso 8/95 – 7/96, en la región Este de la República Dominicana.
Tiempo en Meses
8/95
9/95
10/95
11/95
12-95
1/96
2/96
3/96
4/96
5/96
6/96
7/96
Xi
n
x
S
Cv
Verde
53
120
154
76
57
56
45
11
0
4
14
4
594
12
49.50
46.60
84.14%
Amarillo Peq.
76
212
274
100
135
53
72
10
0
9
9
18
968
12
80.67
83.92
104.03
Amarillo Gde.
50
142
325
86
64
21
32
1
0
6
12
5
744
12
62
89.13
143.76
XG 64.06
Sx2 246.06
S21 5,719.43
S 2 738.19
2
Fc 0.129
0.05 F2 ,33 19.50
0.01 F2 ,33 99.50
4.- Interpretación de los datos de los cuadros No. 4, 5, 6, 7 y 8.
El análisis de los estadísticos X, S y CV de los cuadros No. 4, 5, 6, 7 y 8, respecto de los tipos de trampas Verde, Amarillo – Pequeño y Amarillo Grande, permite concluir, en términos descriptivos, que:
1- Las trampas de color amarillo son las que han presentado los promedios mas altos:
1.1- Las trampas amarillo – pequeño, con los atrayentes:
Mango ( X= 22.08) > chinola ( X= 21.92) > piña ( X= 1
7.50)
1.2- Las trampas amarillo – grande, con los atrayentes:
Naranja ( X= 19.08 ) > guineo ( X= 9.42)
Aunque es oportuno señalar que las trampas de color verde son las que presentan en términos generales la menor variabilidad, en relación con la X, excepto en los casos de los atrayentes guineo ( CV = 155.90) y naranja ( CV = 71.27).
5- Interpretación de los datos estadísticos del cuadro No. 9
Dado que Fc = 0.129 < 0.05 Ft2 ,33 = 19.50, o mejor dicho, que Fc = 0.129 cae dentro del área de aceptación de la Ho (Hipótesis Nula), lo que implica rechazar la Ha (Hipótesis Alternativa), se concluye que no existen diferencias estadísticas significativas, nivel de = 5% ni al nivel de = 1 % (0.01 Ft2,33 = 99.50), entre las medias de los diferentes tipos de trampas.
Cuadro No. 10 : Prueba t
Trampas
Verde
Amarillo Peq.
Amarillo Gde.
Tci
-1.14
1.30
-0.16
t 0.05/2,10
2.228
Dado que t < (2, n – 2), se concluye que no existen diferencias entre los medios de las trampas, por lo que pueden ser considerados, en términos estadísticos, como similares.
BIBLIOGRAFIAS:
- Cheslavo A. Korytkowski, Adaptadas de Borrar, D. J.& R., E. White, 1970 A Field Guide to the insect of América North of Mexico. Horghton, Mifflin, Co. Boston, 404 p.p
- Cirio U. (ENEA, Waley), Economoponlos, A. (IAEA, coordinator), 1986, Fruit Flies Proceding of the recont, International Symposium, Edited by A. P. Economoponlos, is BN: 0-444-987976-3.
- FAO – OIRSA, 1987, Distribución Geográfica y Monitoreo de Poblaciones de Moscas del Mediterráneo en Centro América y Panamá. Informe al 31 de Diciembre del 1987.
- Montiel A.; Madueño C. 1995 Determinación del umbral de tratamiento para la mosca del olivo (Bractocera oleae, Gmel., Diptera: Tephritidae) en olivar de producción de aceite de Jaén. Boletín de Sanidad Vegetal, Plagas (1995) 21 (4) 589-566 [Es, en Aref].
- Nicanor J. Liquido and Roy T. Cunmingham, 1989, Ecological Considerations in Evadicating Exotic Fruit Fly Introductions, Guatemala. Abril 1989.
- Shelly, T. E. ; Whittier, T.S. ; Vellalobos, E. M. 1996, Trimedlure affects mating succes and mate attention in male Mediterranean fruit flies Entomologia Experimentali et applicata (1996) 78 (2) 181-185 [En, 30 ref.] Hawaiian Evolutionary Biology Program. University of Hawaii, Honolulu, HI 96822 USA.
Observación:
Este trabajo de investigación participaron técnico de
La SEA..
MANEJO CULTIVO YUCA REP.DOM.
CULTIVO DE YUCA
Situación del producto a nivel nacional
La yuca ha sido empleada en Sudamérica desde mucho antes de la Colonia, como parte importante en la alimentación de las tribus, se cree que es originaria de Brasil. Es una raíz de forma elongada cubierta por una cáscara áspera de color rosado/café; su densa y fibrosa pulpa es de color blanco.
La yuca en Ecuador, es un cultivo tradicional que se produce en la costa occidental, la amazonía oriental y los calles interandinos ( tales como Loja y Santo Domingo de los Colorados), desde hace mucho tiempo. En Manabí, el mayor porcentaje de productores está constituido por pequeños agricultores de escasos recursos, que la siembran generalmente como cultivo de subsistencia en superficies de 0.25 a 5.0 hectáreas, sin utilizar tecnologías mejoradas y de preferencia intercalada con maíz; de tal suerte que, para optimizar los rendimientos, debe hacerse mediante técnicas sencillas, baratas y de fácil aplicación, considerando además que la siembra se la hace en áreas de baja fertilidad y poca precipitación. (Ver mapa), a nivel intensivo se siembran variedades desarrolladas o recomendadas por el INIAP (Portoviejo 650 y “Tres meses” para el trópico, Escancela y morada para el subtrópico), de su parte, la Corporación PROEXANT recomienda el uso de la variedad Valencia por su alto rendimiento, valor comercial especialmente a nivel internacional y por su adaptabilidad a las condiciones de Santo Domingo de los Colorados y la región Amazónica.
En algunas zonas de Manabí y Esmeraldas se organizaron las denominadas Asociaciones de Pequeños Productores de Yuca (APPYS) y una unión de organizaciones denominada UAPY, su objetivo fue introducir nuevas tecnologías de cultivo, producir yuca fresca y congelada para la exportación. Así mismo se produce un subproducto que sirve de aglutinante para alimento balanceado de camarones. Existe una buena posibilidad de exportación de yuca congelada para los mercados étnicos en Norteamérica y se han desarrollado industrias de harina precocida para la fabricación de panes.
La partida arancelaria NANDINA es 0714100000 “Raíces de mandioca frescas o congeladas”. Las partidas CUCI son: 0548101000 “Yuca fresca”, 0548102000 “Yuca congelada” y 056690200 “Yuca en conserva”.
PRÁCTICAS CULTURALES PARA ELEVAR LA PRODUCCIÓN DE YUCA
La yuca (Manihot esculenta, Crantz), es producida en su mayor parte por pequeños agricultores que no dependen de insumos ni tecnologías asociadas con la agricultura moderna. Cultivada tradicionalmente en suelos de baja fertilidad, se propaga vegetativamente y a bajo costo por unidad de superficie, con rendimientos de 1 a 3 kg. y hasta 7 kg. de raíces por planta. Tiene un alto contenido de carbohidratos, es tolerante a la sequía, plagas y enfermedades y se la cosecha en varias épocas del año; se la utiliza en la industria y en la alimentación humana y animal.
En los países tropicales, la yuca ocupa el cuarto lugar, después del arroz, del maíz y la caña de azúcar, en lo referente a cantidad de calorías producidas y utilizada directamente para el consumo humano. Sin embargo, el esfuerzo en la investigación e implementación de nuevas tecnologías de producción de alimentos en las áreas tropicales dedicadas al cultivo de la yuca resulta mínima si comparamos con lo empleado en cereales.
Hechos recientes en cuanto a disponibilidad de tecnología de alta producción, oportunidades de exportación y posibilidad de utilizar los excedentes en la alimentación animal y otros usos industriales han despertado el interés de muchos países, entre ellos Ecuador, para incluir a este cultivo dentro de sus planes de investigación y fomento.
TECNOLOGIA DE PRODUCCION
La tecnología debe incluir variedades de fácil manejo y prácticas agronómicas y fitosanitarias que son sencillas y baratas. Con esta tecnología, se ha logrado casi duplicar el rendimiento de las variedades locales y mejorar el de los materiales introducidos.
Estas tecnologías consisten básicamente de lo siguiente:
1. Buena preparación del suelo
2. Selección y protección de las estacas,
3. Uso de estacas de 20 cm y con 5 yemas como mínimo.
4. Siembra sobre los surcos cuando los suelos son pesados y existen altas precipitaciones,
5. Población adecuadas de plantas
6. Rotación del cultivo, por lo menos cada tres años.
En Colombia, en siete años de validación de esta tecnología, hecha por el CIAT en 12 localidades bajo diferentes condiciones edáficas y climáticas, se ha duplicado el rendimiento con las variedades locales y triplicado con las variedades seleccionadas, (yuca valencia).
PREPARACION DEL SUELO
Para obtener una buena brotación y enraizamiento de las estacas, se requiere, además de humedad adecuada, de una buena preparación del suelo. En suelos con topografía plana, se puede preparar la tierra de manera similar como para la siembra de maíz, evitando de esta forma la germinación de semillas de malezas.
El agricultor ecuatoriano siembra la yuca mayormente asociada con maíz, en terreno con pendiente (loma). En este caso, es necesario contar arbustos, enredaderas o los residuos de la cosecha anterior, dos o tres meses antes de la siembra, amontonarlos y al final de la época seca quemarlos, ya que si se dejan en el suelo pueden servir como medios de propagación de insectos y enfermedades y causar graves en plantaciones sucesivas de yuca.
La eliminación de la soca, tallos y mas desechos ayuda a mantener un nivel bajo de daños.
SELECCION Y PROTECCION DE LAS ESTACAS
De la calidad del material de siembra depende en gran parte el éxito en cultivos multiplicados vegetativamente. Este factor, es de los más importantes en la producción, responsable no sólo del buen establecimiento del cultivo (enraizamiento de las estacas y brotación de las yemas), sino de su sanidad y producción (número de raíces comerciales por planta)por unidad de superficie en cada ciclo.
Las estacas de yuca pueden sembrarse inmediatamente de cortadas las plantas maduras o después de un período de almacenamiento. Se acostumbra cortar y almacenar bajo sombra de un árbol y antes de la siembra se realiza la selección. Estas estacas regularmente tienen menor porcentaje de brotación, vigor y rendimiento, que aquellas tratadas con insecticidas y fungicidas antes del almacenamiento.
CRITERIOS PARA SELECCIONAR "SEMILLAS"
Los criterios para seleccionar material para la siembra son:
• Separar estacas de las plantas más productivas,
• Escoger estacas libres de plagas y enfermedades,
• Utilizar varetas (palos)que tengan la madurez apropiada de 8-12 meses, si tienen más de un año y medio es aconsejable tomar la parte superior,
• Evitar estacas con una mezcla de fungicidas e insecticidas, y
• Reducir al mínimo el almacenamiento.
CARACTERISTICAS DE LAS ESTACAS PARA SIEMBRA
• Diámetro mayor a la mitad del diámetro de la porción más gruesa del tallo,
• Longitud entre 15 y 20 cm (depende de la variedad),
• Número de nudos por estacas de 5 a 7 (de acuerdo a la variedad), y
• Corte transversal.
EL TRATAMIENTO DE ESTACAS
Es aconsejable tratar las estacas con un baño químico, en la siguiente forma:
• Tratar con fungicida más insecticida en un lugar bajo sombra,
• Mezclar primero el insecticida con agua; agregar después fungicida,
• Preparar 100-120 litros/tanque,
• Tratar primero la mitad de estacas atadas durante 5 minutos y luego la otra por igual tiempo,
• Mover la solución cada vez que se traten nuevas estacas, y
• Protegerse con un forro plástico, guantes y máscara.
Las ventajas de estos tratamiento son:
• Protege las estacas contra organismos patógenos del suelo, almacenamiento.
• Acelera y aumenta la germinación de las yemas,
• Induce el enraizamiento, y
• Prolonga el período de
SIEMBRA SOBRE SURCOS
Este sistema es ventajoso para áreas donde las pudriciones radicales constituyen un riesgo grave, pudiendo causar pérdidas de rendimiento hasta del 80%.
POBLACIONES ADECUADAS DE PLANTAS
La población y los rendimiento adecuados, varían de un país a otro, e incluso dentro del mismo país y zona ecológica. En general, los suelos pobres muestran buenas respuestas a los aumentos de poblaciones, mientras que en los suelos ricos los incrementos de poblaciones depende del hábito de crecimiento.
Con la variedad Valencia, la Corporación PROEXANT ha logrado la máxima producción con 15.000 plantas/ha. Nuestro agricultor emplea poblaciones de 5.000 plantas/ha cuando asocia y 10.000 plantas/ha para yuca en monocultivo, poblaciones que se encuentran dentro de los rangos establecidos. En conclusión, la densidad depende del tipo de planta, la fertilidad del suelo y las malas hierbas existentes.
CONTROL OPORTUNO DE MALEZAS
La yuca es una especie poco competitiva con las malezas, por lo que la eliminación de éstas, constituye una labor esencial para obtener altos rendimientos. Si no se controlan las malezas, los rendimientos pueden disminuir en un 50%, mientras que con un mínimo de labor la yuca puede sobrevivir, competir y producir buenas cosechas. Se aconseja controlar las malezas durante los primeros meses del cultivo.
Se considera que la deshierba representa más del 45% de los costos de producción, que en su mayoría corresponden a mano de obra. En zonas donde está es escasa y cara, una solución es aplicar herbicidas. El departamento de Control de Malezas de la E.E. Portoviejo del INIAP aconseja para monocultivo de yuca aplicar 1 kg. de diurón y en asociación 1/2 kg. de diurón. También puede aplicarse un quemante (Gramoxone) en postemergencia dirigido, utilizando pantallas protectoras. Sin embargo, hay muchas ventajas por la deshierba manual, en cuanto a seguridad del trabajador y falta de residuos químicos.
ROTACION DE CULTIVOS
La yuca se caracteriza por producir en suelos ácidos y pobres. Muchas veces es el último cultivo que se siembra en un programa de rotación, debido a la capacidad de producir, a pesar de la falta de nutrientes de suelos empobrecidos. Las siembras consecutivas pueden inducir a que los patógenos y las plagas se incrementen progresivamente. Por esta razón, es necesario dejar o rotar el terreno después de la segunda o tercera cosecha consecutiva de yuca. Si se siembra otro cultivo después de la yuca, es aconsejable fertilizar apropiadamente.
________________________________________
YUCA (Cassava)
Nombre común: Casava, mandioca, yuca
Nombre científico: Manihot sculenta Crantz
Variedades: Valencia (principal variedad de exportación)
Requerimientos del cultivo
Agroecológicos
Clima Trópico, sub trópico, cálido
Temperatura 26 - 28 °C, no apta a menos de 17 °C.
Hora - luz 10 - 12 (fotoperiodo)
Humedad 80 - 90%
Pluviosidad 800 - 1,800 mm. anuales
Altitud Hasta 1,000 m.s.n.m.
Vientos menores de 30 km / h
Formación ecológica Bosque húmedo tropical, bosque seco tropical.
Requerimientos edáficos
Textura Francos, ligeros, con buen drenaje.
Acidez 5.5 a 7.5
Tipo de suelo Bien drenados, francos, franco - limosos, profundos, ricos en potasio.
Zonas de cultivo en el Ecuador
El cultivo se desarrolla en las estribaciones exteriores de la cordillera, pie de monte, llanuras tropicales, en todas las provincias del Ecuador, incluido Galápagos.
Ciclo del cultivo
Desarrollo de la plantación 10 meses.
Inicio de la cosecha 10 meses.
Manejo del cultivo
Sistema de propagación vía estacas .-
La propagación comercial de la yuca es mediante estacas gruesas de tallo maduros y sanos, con 6 u 8 yemas, de las cuales 4 se entierran, la estaca se planta inclinada para facilitar la cosecha.
Siembra
Material de siembra Estacas sanas y vigorosas
Distancia de siembra 1.0 m entre hileras y 60 cm entre plantas, depositando una estaquilla por sitio.
Densidad de plantas 8,500 a 10,000 plantas por ha.
Epoca de plantación Al inicio del periodo de lluvias.
La siembra de la yuca puede ser en plano si el suelo del terreno tiene muy buen drenaje y la precipitación no es abundante, o en lomillos si el suelo es pesado, la precipitación es elevada o si se ha planeado hacer la cosecha en forma semimecanizada, este sistema facilita el desarrollo de las raíces y su cosecha, disminuye la incidencia de la pudrición radical. Es importante indicar que no es aconsejable sembrar yuca en suelos donde anteriormente había bosque natural (monte) o cultivos forestales, en este caso, primero debe sembrarse un cereal como maíz o arroz
Se ha demostrado que la yuca no responde a la fertilización, sin embargo se ha dicho que es un cultivo que esteriliza el suelo, pues extrae sus nutrimentos, esto origina que cultivos sucesivos de yuca en un mismo terreno disminuyan sus rendimientos. Por lo tanto se recomienda no sembrar dos veces seguidas en un mismo lote si no se adiciona fertilizante en la segunda siembra para mantener el nivel adecuado de los nutrimentos, caso contrario, lo más conveniente es hacer rotar el cultivo.
Combate de malezas.-
El periodo crítico de competencia con las malezas va desde la siembra hasta los tres meses, se recomienda aplicar herbicidas preemergentes que tengan efecto selectivo, como diurón (karmex) o linurón (afalón).
Problemas fitosanitarios
Plagas
Nombre común Nombre científico Tratamiento Dosis
Arañita roja
Acaro verde Tetranychus urticae
Mononychellus caribbeanae Avermectina
Monocrotofos
Metamidofos 40 ml en 100 l
1.0 - 1.5 l / ha
0.75 - 1.0 l / ha
Enfermedades
Nombre común Nombre científico Tratamiento Dosis
Sarna
Pudrición radical Sphaceloma manihoticola
Erwinia sp. Aplicación de fungicidas en base de cobre, como los aplicados para la mancha parda
mancha parda Cercospora Henningsii Oxicloruro de cobre
Clorotalonil 200 g / ha
300 g / 100 l
Estos tratamientos solo se aplican en casos extremos, ya que en el caso de infestaciones menores, la planta soporta el daño y su combate no es rentable.
Epoca de cosecha
1. Al observarse cambios ligeros en la coloración, estado menos lechoso.
2. Se lo realiza manualmente.
Rendimiento
Puede alcanzar las 30 TM / ha.
Costo de establecimiento y producción
El costo de inversión por ha es de US$ 600.00, a campo abierto para cada ciclo, es un cultivo que debería aprovecarse más para la exportación congelada, como snack y como almidón elaborado (el precio del almidón de yuca es más alto que otros similares).
Manejo postcosecha
Limpieza.- Se deben eliminar especialmente los residuos de cosechas, hojas, impurezas, etc.
Clasificación.- Existen índices de clasificación en función con el largo de la raíz, deben descartarse las raíces que poseen demasiada formación fibrilar.
Almacenamiento.- A una temperatura de por lo menos 4 °C, con una humedad relativa del 80 - 90%. Para exportación, el uso de gas nitrógeno en bolsas plásticas en que se empaca el producto ha sido efectivo al almacenar.
Países de destino
El principal mercado de destino, sumados todos los rubros de yuca ecuatoriana es Colombia, además es el mayor comprador de yuca fresca y congelada, seguido por Estados Unidos con volúmenes considerablemente menores.
Ing. Tomás García Minaya
Situación del producto a nivel nacional
La yuca ha sido empleada en Sudamérica desde mucho antes de la Colonia, como parte importante en la alimentación de las tribus, se cree que es originaria de Brasil. Es una raíz de forma elongada cubierta por una cáscara áspera de color rosado/café; su densa y fibrosa pulpa es de color blanco.
La yuca en Ecuador, es un cultivo tradicional que se produce en la costa occidental, la amazonía oriental y los calles interandinos ( tales como Loja y Santo Domingo de los Colorados), desde hace mucho tiempo. En Manabí, el mayor porcentaje de productores está constituido por pequeños agricultores de escasos recursos, que la siembran generalmente como cultivo de subsistencia en superficies de 0.25 a 5.0 hectáreas, sin utilizar tecnologías mejoradas y de preferencia intercalada con maíz; de tal suerte que, para optimizar los rendimientos, debe hacerse mediante técnicas sencillas, baratas y de fácil aplicación, considerando además que la siembra se la hace en áreas de baja fertilidad y poca precipitación. (Ver mapa), a nivel intensivo se siembran variedades desarrolladas o recomendadas por el INIAP (Portoviejo 650 y “Tres meses” para el trópico, Escancela y morada para el subtrópico), de su parte, la Corporación PROEXANT recomienda el uso de la variedad Valencia por su alto rendimiento, valor comercial especialmente a nivel internacional y por su adaptabilidad a las condiciones de Santo Domingo de los Colorados y la región Amazónica.
En algunas zonas de Manabí y Esmeraldas se organizaron las denominadas Asociaciones de Pequeños Productores de Yuca (APPYS) y una unión de organizaciones denominada UAPY, su objetivo fue introducir nuevas tecnologías de cultivo, producir yuca fresca y congelada para la exportación. Así mismo se produce un subproducto que sirve de aglutinante para alimento balanceado de camarones. Existe una buena posibilidad de exportación de yuca congelada para los mercados étnicos en Norteamérica y se han desarrollado industrias de harina precocida para la fabricación de panes.
La partida arancelaria NANDINA es 0714100000 “Raíces de mandioca frescas o congeladas”. Las partidas CUCI son: 0548101000 “Yuca fresca”, 0548102000 “Yuca congelada” y 056690200 “Yuca en conserva”.
PRÁCTICAS CULTURALES PARA ELEVAR LA PRODUCCIÓN DE YUCA
La yuca (Manihot esculenta, Crantz), es producida en su mayor parte por pequeños agricultores que no dependen de insumos ni tecnologías asociadas con la agricultura moderna. Cultivada tradicionalmente en suelos de baja fertilidad, se propaga vegetativamente y a bajo costo por unidad de superficie, con rendimientos de 1 a 3 kg. y hasta 7 kg. de raíces por planta. Tiene un alto contenido de carbohidratos, es tolerante a la sequía, plagas y enfermedades y se la cosecha en varias épocas del año; se la utiliza en la industria y en la alimentación humana y animal.
En los países tropicales, la yuca ocupa el cuarto lugar, después del arroz, del maíz y la caña de azúcar, en lo referente a cantidad de calorías producidas y utilizada directamente para el consumo humano. Sin embargo, el esfuerzo en la investigación e implementación de nuevas tecnologías de producción de alimentos en las áreas tropicales dedicadas al cultivo de la yuca resulta mínima si comparamos con lo empleado en cereales.
Hechos recientes en cuanto a disponibilidad de tecnología de alta producción, oportunidades de exportación y posibilidad de utilizar los excedentes en la alimentación animal y otros usos industriales han despertado el interés de muchos países, entre ellos Ecuador, para incluir a este cultivo dentro de sus planes de investigación y fomento.
TECNOLOGIA DE PRODUCCION
La tecnología debe incluir variedades de fácil manejo y prácticas agronómicas y fitosanitarias que son sencillas y baratas. Con esta tecnología, se ha logrado casi duplicar el rendimiento de las variedades locales y mejorar el de los materiales introducidos.
Estas tecnologías consisten básicamente de lo siguiente:
1. Buena preparación del suelo
2. Selección y protección de las estacas,
3. Uso de estacas de 20 cm y con 5 yemas como mínimo.
4. Siembra sobre los surcos cuando los suelos son pesados y existen altas precipitaciones,
5. Población adecuadas de plantas
6. Rotación del cultivo, por lo menos cada tres años.
En Colombia, en siete años de validación de esta tecnología, hecha por el CIAT en 12 localidades bajo diferentes condiciones edáficas y climáticas, se ha duplicado el rendimiento con las variedades locales y triplicado con las variedades seleccionadas, (yuca valencia).
PREPARACION DEL SUELO
Para obtener una buena brotación y enraizamiento de las estacas, se requiere, además de humedad adecuada, de una buena preparación del suelo. En suelos con topografía plana, se puede preparar la tierra de manera similar como para la siembra de maíz, evitando de esta forma la germinación de semillas de malezas.
El agricultor ecuatoriano siembra la yuca mayormente asociada con maíz, en terreno con pendiente (loma). En este caso, es necesario contar arbustos, enredaderas o los residuos de la cosecha anterior, dos o tres meses antes de la siembra, amontonarlos y al final de la época seca quemarlos, ya que si se dejan en el suelo pueden servir como medios de propagación de insectos y enfermedades y causar graves en plantaciones sucesivas de yuca.
La eliminación de la soca, tallos y mas desechos ayuda a mantener un nivel bajo de daños.
SELECCION Y PROTECCION DE LAS ESTACAS
De la calidad del material de siembra depende en gran parte el éxito en cultivos multiplicados vegetativamente. Este factor, es de los más importantes en la producción, responsable no sólo del buen establecimiento del cultivo (enraizamiento de las estacas y brotación de las yemas), sino de su sanidad y producción (número de raíces comerciales por planta)por unidad de superficie en cada ciclo.
Las estacas de yuca pueden sembrarse inmediatamente de cortadas las plantas maduras o después de un período de almacenamiento. Se acostumbra cortar y almacenar bajo sombra de un árbol y antes de la siembra se realiza la selección. Estas estacas regularmente tienen menor porcentaje de brotación, vigor y rendimiento, que aquellas tratadas con insecticidas y fungicidas antes del almacenamiento.
CRITERIOS PARA SELECCIONAR "SEMILLAS"
Los criterios para seleccionar material para la siembra son:
• Separar estacas de las plantas más productivas,
• Escoger estacas libres de plagas y enfermedades,
• Utilizar varetas (palos)que tengan la madurez apropiada de 8-12 meses, si tienen más de un año y medio es aconsejable tomar la parte superior,
• Evitar estacas con una mezcla de fungicidas e insecticidas, y
• Reducir al mínimo el almacenamiento.
CARACTERISTICAS DE LAS ESTACAS PARA SIEMBRA
• Diámetro mayor a la mitad del diámetro de la porción más gruesa del tallo,
• Longitud entre 15 y 20 cm (depende de la variedad),
• Número de nudos por estacas de 5 a 7 (de acuerdo a la variedad), y
• Corte transversal.
EL TRATAMIENTO DE ESTACAS
Es aconsejable tratar las estacas con un baño químico, en la siguiente forma:
• Tratar con fungicida más insecticida en un lugar bajo sombra,
• Mezclar primero el insecticida con agua; agregar después fungicida,
• Preparar 100-120 litros/tanque,
• Tratar primero la mitad de estacas atadas durante 5 minutos y luego la otra por igual tiempo,
• Mover la solución cada vez que se traten nuevas estacas, y
• Protegerse con un forro plástico, guantes y máscara.
Las ventajas de estos tratamiento son:
• Protege las estacas contra organismos patógenos del suelo, almacenamiento.
• Acelera y aumenta la germinación de las yemas,
• Induce el enraizamiento, y
• Prolonga el período de
SIEMBRA SOBRE SURCOS
Este sistema es ventajoso para áreas donde las pudriciones radicales constituyen un riesgo grave, pudiendo causar pérdidas de rendimiento hasta del 80%.
POBLACIONES ADECUADAS DE PLANTAS
La población y los rendimiento adecuados, varían de un país a otro, e incluso dentro del mismo país y zona ecológica. En general, los suelos pobres muestran buenas respuestas a los aumentos de poblaciones, mientras que en los suelos ricos los incrementos de poblaciones depende del hábito de crecimiento.
Con la variedad Valencia, la Corporación PROEXANT ha logrado la máxima producción con 15.000 plantas/ha. Nuestro agricultor emplea poblaciones de 5.000 plantas/ha cuando asocia y 10.000 plantas/ha para yuca en monocultivo, poblaciones que se encuentran dentro de los rangos establecidos. En conclusión, la densidad depende del tipo de planta, la fertilidad del suelo y las malas hierbas existentes.
CONTROL OPORTUNO DE MALEZAS
La yuca es una especie poco competitiva con las malezas, por lo que la eliminación de éstas, constituye una labor esencial para obtener altos rendimientos. Si no se controlan las malezas, los rendimientos pueden disminuir en un 50%, mientras que con un mínimo de labor la yuca puede sobrevivir, competir y producir buenas cosechas. Se aconseja controlar las malezas durante los primeros meses del cultivo.
Se considera que la deshierba representa más del 45% de los costos de producción, que en su mayoría corresponden a mano de obra. En zonas donde está es escasa y cara, una solución es aplicar herbicidas. El departamento de Control de Malezas de la E.E. Portoviejo del INIAP aconseja para monocultivo de yuca aplicar 1 kg. de diurón y en asociación 1/2 kg. de diurón. También puede aplicarse un quemante (Gramoxone) en postemergencia dirigido, utilizando pantallas protectoras. Sin embargo, hay muchas ventajas por la deshierba manual, en cuanto a seguridad del trabajador y falta de residuos químicos.
ROTACION DE CULTIVOS
La yuca se caracteriza por producir en suelos ácidos y pobres. Muchas veces es el último cultivo que se siembra en un programa de rotación, debido a la capacidad de producir, a pesar de la falta de nutrientes de suelos empobrecidos. Las siembras consecutivas pueden inducir a que los patógenos y las plagas se incrementen progresivamente. Por esta razón, es necesario dejar o rotar el terreno después de la segunda o tercera cosecha consecutiva de yuca. Si se siembra otro cultivo después de la yuca, es aconsejable fertilizar apropiadamente.
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YUCA (Cassava)
Nombre común: Casava, mandioca, yuca
Nombre científico: Manihot sculenta Crantz
Variedades: Valencia (principal variedad de exportación)
Requerimientos del cultivo
Agroecológicos
Clima Trópico, sub trópico, cálido
Temperatura 26 - 28 °C, no apta a menos de 17 °C.
Hora - luz 10 - 12 (fotoperiodo)
Humedad 80 - 90%
Pluviosidad 800 - 1,800 mm. anuales
Altitud Hasta 1,000 m.s.n.m.
Vientos menores de 30 km / h
Formación ecológica Bosque húmedo tropical, bosque seco tropical.
Requerimientos edáficos
Textura Francos, ligeros, con buen drenaje.
Acidez 5.5 a 7.5
Tipo de suelo Bien drenados, francos, franco - limosos, profundos, ricos en potasio.
Zonas de cultivo en el Ecuador
El cultivo se desarrolla en las estribaciones exteriores de la cordillera, pie de monte, llanuras tropicales, en todas las provincias del Ecuador, incluido Galápagos.
Ciclo del cultivo
Desarrollo de la plantación 10 meses.
Inicio de la cosecha 10 meses.
Manejo del cultivo
Sistema de propagación vía estacas .-
La propagación comercial de la yuca es mediante estacas gruesas de tallo maduros y sanos, con 6 u 8 yemas, de las cuales 4 se entierran, la estaca se planta inclinada para facilitar la cosecha.
Siembra
Material de siembra Estacas sanas y vigorosas
Distancia de siembra 1.0 m entre hileras y 60 cm entre plantas, depositando una estaquilla por sitio.
Densidad de plantas 8,500 a 10,000 plantas por ha.
Epoca de plantación Al inicio del periodo de lluvias.
La siembra de la yuca puede ser en plano si el suelo del terreno tiene muy buen drenaje y la precipitación no es abundante, o en lomillos si el suelo es pesado, la precipitación es elevada o si se ha planeado hacer la cosecha en forma semimecanizada, este sistema facilita el desarrollo de las raíces y su cosecha, disminuye la incidencia de la pudrición radical. Es importante indicar que no es aconsejable sembrar yuca en suelos donde anteriormente había bosque natural (monte) o cultivos forestales, en este caso, primero debe sembrarse un cereal como maíz o arroz
Se ha demostrado que la yuca no responde a la fertilización, sin embargo se ha dicho que es un cultivo que esteriliza el suelo, pues extrae sus nutrimentos, esto origina que cultivos sucesivos de yuca en un mismo terreno disminuyan sus rendimientos. Por lo tanto se recomienda no sembrar dos veces seguidas en un mismo lote si no se adiciona fertilizante en la segunda siembra para mantener el nivel adecuado de los nutrimentos, caso contrario, lo más conveniente es hacer rotar el cultivo.
Combate de malezas.-
El periodo crítico de competencia con las malezas va desde la siembra hasta los tres meses, se recomienda aplicar herbicidas preemergentes que tengan efecto selectivo, como diurón (karmex) o linurón (afalón).
Problemas fitosanitarios
Plagas
Nombre común Nombre científico Tratamiento Dosis
Arañita roja
Acaro verde Tetranychus urticae
Mononychellus caribbeanae Avermectina
Monocrotofos
Metamidofos 40 ml en 100 l
1.0 - 1.5 l / ha
0.75 - 1.0 l / ha
Enfermedades
Nombre común Nombre científico Tratamiento Dosis
Sarna
Pudrición radical Sphaceloma manihoticola
Erwinia sp. Aplicación de fungicidas en base de cobre, como los aplicados para la mancha parda
mancha parda Cercospora Henningsii Oxicloruro de cobre
Clorotalonil 200 g / ha
300 g / 100 l
Estos tratamientos solo se aplican en casos extremos, ya que en el caso de infestaciones menores, la planta soporta el daño y su combate no es rentable.
Epoca de cosecha
1. Al observarse cambios ligeros en la coloración, estado menos lechoso.
2. Se lo realiza manualmente.
Rendimiento
Puede alcanzar las 30 TM / ha.
Costo de establecimiento y producción
El costo de inversión por ha es de US$ 600.00, a campo abierto para cada ciclo, es un cultivo que debería aprovecarse más para la exportación congelada, como snack y como almidón elaborado (el precio del almidón de yuca es más alto que otros similares).
Manejo postcosecha
Limpieza.- Se deben eliminar especialmente los residuos de cosechas, hojas, impurezas, etc.
Clasificación.- Existen índices de clasificación en función con el largo de la raíz, deben descartarse las raíces que poseen demasiada formación fibrilar.
Almacenamiento.- A una temperatura de por lo menos 4 °C, con una humedad relativa del 80 - 90%. Para exportación, el uso de gas nitrógeno en bolsas plásticas en que se empaca el producto ha sido efectivo al almacenar.
Países de destino
El principal mercado de destino, sumados todos los rubros de yuca ecuatoriana es Colombia, además es el mayor comprador de yuca fresca y congelada, seguido por Estados Unidos con volúmenes considerablemente menores.
Ing. Tomás García Minaya
TRABAJO DE INVESTIGACION SORGO
HISTORIA DEL CULTIVO EN NUESTRO PAIS:
En nuestro país en la década de los 80, este cultivo estaba siendo cultivado en la región sur específicamente en Oviedo Provincia Pedernales, y en Azua, en eso año una 275,000 tas. Estaban sembrada, esta zona era tradicional en esta actividad, pero en la actualidad no se registran siembra del mismo. La variedad que se cultivaban era el del grano blanco y rojo.
INFORMACIONES DE
23 de junio del año en curso. La secretaria de estado de agricultura informo que impulsara la producción de sorgo y maíz en todo el país, con la finalidad de evitar un desabastecimiento que afecte a la industria avícola y porcina del país como consecuencia de la escasez mundial de estos granos, la cartera agrícola explico que impulsara la siembra de más de 600,000 tas. De estos rubros. Conjuntamente con el sector privado (agroindustrial), como medida estratégica ante el incremento de precios registrado en los mercados internacionales, además estableció precio de sustentación del sorgo en RD$550.00 pesos el quintal como forma de estimular a los productores para que incrementen la siembra de estos renglones. Resolución No. 05-2008, la que establece el monto se aplique siempre que el grano cumpla con las normas establecidas de grados de impurezas y humedad requeridas.
ORIGEN:
Es originario del llano de occidente (África)
FITOMEJORAMIENTO EN EL PAIS:
Por Introducción, que es un objetivo pero es nuestra experiencia en el manejo del cultivo, pero según informaciones obtenida por Internet observamos que en nicaragua en la región norte, ellos han obtenido fitomejoramiento del cultivo por las dinámicas campesinas participativa especialmente en la variedad sorgo blanco (sorghum bicolor),
INTRODUCCION E IMPORTACIA DEL CULTIVO EN OTRO PAIS:
El sorgo granifero es el cuarto cereal en importancia mundial. Actualmente se siembra más de 40 millones de hectáreas en la faja comprendida entre los 50 grado latitud norte y 50 grado latitud sur. Los principales países productores son: India, Nigeria, USA., Sudán, México, y Argentina. Siendo este cultivo de gran importancia en países en vías de desarrollo de África, Asia y Latinoamérica.
En el continente americano para el año 1992 USA aprecio como el mayor productor de sorgo, con cerca de 5 millones de ha. Y una producción de aproximadamente 22 millones de toneladas. Seguido por méxico con 5.1 millones de toneladas, argentina con 2.8 millones de toneladas, Venezuela y Colombia con 528,000 y 752,000 de toneladas respectivamente.
El sorgo granifero fue introducido en Venezuela durante el siglo pasado. Comenzado su producción comercialmente al inicio de la década de los 70, cuando la iniciativa privada establece un importante programa de investigación y producción en la zona de chaguaramas, estado Guárico. Desde ese momento se produce un acelerado desarrollo en la producción del cereal al pasar de aproximadamente
Este importante crecimiento se debe a varios factores:
1.-Áreas Agro ecológicas aptas para el cultivo.
2.-parque de maquinarias adecuado
3.-rusticidad tolerancia a sequías
4.-alta demanda de materia prima por la industria de alimentos concentrados
5.-uso de restos de cosecha en alimentos animal
6.-políticas proteccionistas y precios remunerativos.
El sorgo gana espacio fundamentalmente en áreas con una base ganadera, al insertarse en sistema de producción agropecuaria dada su característica del cultivo de doble propósito granos para la industria y resto de cosecha para pastoreo de bovinos. En este sentido ha sido y es pieza importante en el desarrollo regionales productoras del país, al rentabilizar areas consideras marginales.
SITEMAS DE PRODUCCION:
El sorgo aparece y se consolida en los llanos Centrales y Orientales por su cualidad de cultivo de doble propósito. En este sentido se introduce en sistemas de producción agropecuaria (SPA) de los siguientes tipos:
-Sorgo x maíz x carne – sorgo x carne.
-sorgo x maíz x ganadería de doble propósito – sorgo x ganadería de doble propósito
Dada las característica de estas regiones el sorgo se siembra como cultivo principal, alta mente mecanizado, en fincas de medianos y grandes productores, en estos llanos Occidentales el sorgo aparece como cultivo de rotación o relevo después del maíz arroz o algodón.
TIPO DE SIEMBRA:
a) se siembra en hileras en densidades medias
PERIODO DE SIEMBRA:
se siembra a inicio del periodo lluvioso junio-julio, en el caso de materiales de porte alto y ciclo largo.
CONCLUSION:
El cultivo del sorgo tiene un importante futuro en las areas tropicales y sub-tropicales este cultivo puede rentabilizar.
El sorgo es base fundamental de sistemas de mixtos, en los cuales permite la explotación de la tierra, durante todo el año periodo lluvioso, producción de granos, producción animal con resto de cosecha en condiciones de alternancia hídrica, garantiza el mantenimiento y eventual ganancia de peso en animales en periodos críticos de sequía
Al evaluar la rentabilidad del sorgo no solo debe – son productos
Para evaluar la importancia del cultivo del sorgo debe su respuesta a económico-social
La investigación participativa debe responder a los requisitos de los productores en sus zonas de producción. Es importante saber las veneración de materiales adaptados según la región y requerimientos de usuarios, mayor inversión en investigación agronómica y de tipo operativo, adecuación del sistema investigación-transferencia-adopción para un impacto mas efectivo.
Bibliografía:
ARIAS, 1. Y López G. 1978, Caracterización de los sistemas de producción en la zona de colinas de
jueves, 2 de abril de 2009
AGROPECUARIA MUNDIAL
Santo Domingo, Republica Dominicana; 02/04/2009-
CONCEPTOS GENERALES
Antes de comentar los aspectos específicos de esta presentación es preciso analizar algunos conceptos, como por ejemplo: qué se entiende por Medio Ambiente? Para (Bru 1988) es la totalidad del entorno material de la vida humana, tanto natural como no. Así mismo, el deterioro ambiental se origina por la acción del hombre como ser social y es la materialización de un proceso histórico de explotación abusiva del medio, basado en premisas ideológicas y formas de organización social. Para Folch (1978) la ciencia ecologista es aquella cuya finalidad es la integración de los aspectos sociales, políticos e ideológicos implicados en el uso humano de los ecosistemas. Se entiende por plaguicidas, las sustancias o ingredientes activos, así como las formulaciones o preparados que contengan una o varias de dichas sustancias o ingredientes activos cuya finalidad sea la de actuar como raticida, desinfectante, insecticida, fungicida, repelente, atrayente, etc.
Desde tiempos inmemoriales el hombre siempre ha causado efectos sobre el ecosistema del cual forma parte. Con el correr del tiempo y el desarrollo de la ciencia y la tecnología esas se han profundizado; es decir que el hombre al aumentar su comodidad y su seguridad, amenaza con trastornar los ecosistemas naturales a un grado casi irreversible.
La primera modificación significativa sobre el ecosistema comenzó con el desarrollo de la agricultura Cuando el hombre era simplemente un recolector de alimentos, su efecto sobre el medio ambiente era mínimo y reducido únicamente a la vecindad inmediata del fuego que mantenía, para el calor y cocinar los alimentos.
Con el advenimiento de la agricultura los efectos aumentaron, hubo necesidad de clarear los bosques de su vegetación natural, para la plantación de los cultivos. La cantidad creciente de alimentos disponibles debido a las plantaciones, estimuló el rápido crecimiento de la población humana, más personas, significó más ocupación de tierras y por lo tanto, aumento a los efectos sobre el medio ambiente.
Con la expansión de la agricultura floreció el comercio que llevo al movimiento entre las poblaciones. Al aumenta la población hubo necesidad de cambiar el estilo de vida, volviéndose cada vez más compleja. Aparecieron entonces, otras actividades tales como la industria el transporte, la construcción urbana y otros caracteres de la vida moderna, señaladas como actividades humanas ecológicamente alteradoras, ya que han tenido consecuencias negativas en le medio ambiente.
4.2.- LA PRODUCCIÓN AGROPECUARIA MODERNA Y SU IMPACTO AMBIENTAL
La producción tradicional, hizo crisis ante un factor considerado primario como lo es el "Mercado". La sociedad ejerció una demanda creciente de productos agropecuarios y así mismo cualificados sobre ciertos productos (carnes). Este efecto no pudo ser correspondido por esa producción tradicional, por lo cual se produjo un desajuste entre oferta y demanda de productos. De esta forma y para dar respuesta parcial a ello, el productor recurrió a la compra masiva de insumos y venta de productos, ingresando en la economía monetaria.
Se produjo entonces el llamado "primer impacto ambiental", en donde el productor recurre a:
- Mecanización
- Empleo de productos químicos (fertilizantes, plaguicidas, conservantes, etc).
- Roturaciones (labranzas) improcedentes.
Todos estos factores llevaron a la alteración del paisaje y al inicio de la contaminación ambiental.
Por otra parte, como consecuencia de este aumento en el consumo, los precios tendieron a elevarse y ser recurrió a la importación de productos. Todo ello atrajo las inversiones de capital extra agrario, conformándose finalmente las características de la agricultura y la ganadería "modernas" que provocaron el "segundo impacto ambiental".
Dichas características son:
- Concentración de la producción, generalmente próxima a los centros de consumo y en unidades de gran magnitud.
- Especialización de la producción, creando núcleos. Todo esto trajo aparejado la disminución en el número de explotaciones, con sus implicancias.
Intensificación de la producción, independizándose del factor tierra para ser independiente.
En el caso de la agricultura, estas características trajeron aparejado:
- Un excesivo uso de fertilizantes, deyecciones animales y plaguicidas, que provocaron en muchos casos contaminación del agua, suelo y aire, además de inconvenientes en la salud de las personas y dudosa calidad de los productos.
- Problemas ambientales, a través de alteración del paisaje, pérdida de la biodiversidad, como también trastornos en la salud.
En el caso de las explotaciones ganaderas, la cronología de este modelo intensivo comenzó con la producción de huevos, seguida por la de pollos, luego los cerdos, para llegar también a los vacunos para carne y leche y otras especies de menor importancia, siendo algunas de sus consecuencias:
- Elevados volúmenes de excrementos y su eliminación, con los problemas de filtración de nitrógeno y fósforo (eutrofización), emisión de metano, dióxido de carbono, amoníaco, sulfídrico. Metales pesados, problemas sanitarios (microorganismos, zoonósis).
- La calidad biológica de las carnes es muy cuestionada, debido al importante uso de antibióticos, pigmentantes, anabólicos y promotores del crecimiento que se utiliza en estos sistemas.
Este modelo intensivo basado en la inversión de capitales, tiene como único objetivo de producción la maximización del beneficio y la producción masal, siendo semejante a
Cualquier proceso de tipo industrial.
4.3.- CAUSAS PRINCIPALES DE LOS PROBLEMAS AMBIENTALES
Como ya dijimos las actividades humanas siempre han producido cambios en el medio ambiente, sin embargo no es sino hasta las ultimas décadas que el impacto de las actividades humanas sobre el medio ambiente se acelero y se hizo mas profundo. Las presiones de vida al rápido crecimiento de la población, el consumo prodigo y descontrolado, la urbanización, la expansión industrial y los avances de la ciencia y tecnología han causado estos cambios acelerados en el medio ambiente.
Entre las causas principales del deterioro ambiental podemos mencionar:
- El rápido crecimiento de la población
- Nuevos problemas a través de la ciencia y la tecnología
- El desarrollo y la industrialización
- Concentración de la población humana.
Estas actividades humanas tienen como consecuencia la contaminación de los medios básicos para la vida tales como: aire, agua y suelo.
4.4.- PROBLEMAS AMBIENTALES DE LA REPUBLICA DOMINICANA
En RD. los problemas ambientales son incontables debido en gran medida a la falta de una conciencia ambiental tanto de autoridades como de pueblo en general, aunado a esto el acelerado crecimiento demográfico con una deficiente infraestructura para atenderlo y los cambios sociales y económicos que experimenta el país.
Sin embargo resulta difícil hacer un estudio profundo de la contaminación ambiental en nuestro país. ya que la información científica con que se cuenta es deficiente, es así que nos hemos visto en serias dificultades para identificar los principales productos agroquímicos contaminantes.
El agua es uno de los elementos que en mayor proporción esta presente en la vida del hombre. Es utilizada para el abastecimiento humano, en la agricultura y en la industria lo que provoca la contaminación de la misma. La contaminación de las aguas digna de tenerse en cuenta es la producida por residuos agrícolas: plaguicidas y fertilizantes, y que llegan a las corrientes superficiales y a las aguas subterráneas.
Hace varios años el uso de plaguicidas en el país se limitaba principalmente en las fincas de hortalizas y algodoneras. Desde entonces los productores y distribuidores de insumos agrícolas intensificaron la promoción comercial de plaguicidas y fertilizantes. Sin embargo, no se hicieron esfuerzos por educar a los usuarios de plaguicidas sobre los peligros asociados con las sustancias químicas ni sobre la ciencia de su manejo.
Las diluciones y medidas no son exactas y los productos se mezclan sin precaución. Este problema no solo afecta la salud pública, sino también tiene efectos negativos sobre los suelos.
Los plaguicidas mas usados antes de 1981 eran casi exclusivamente Órgano clorados y hay evidencia de que estos productos persisten en los suelos de la Rep. Dominicana.
El uso actual de plaguicidas a base de Piretroides, Carbamatos y productos Órgano fosforados es muy intenso y aunque la biodegradación de estas sustancias en los suelos tropicales es relativamente rápida, su manejo inapropiado sobrecarga los suelos con productos químicos tóxicos y sus metabolitos.
Aunque en R.D. no se han hecho estudios exhaustivos en todo el país, si se sabe que en las zonas donde se practican cultivos intensivos hay problemas serios de contaminación como es el caso de Constanza.
A medida que se manipulan los plaguicidas, se corre un alto riesgo de entrar en contacto con estos; este riesgo depende de la atención en el tiempo de manipuleo y del uso de la indumentaria adecuada para trabajar con estos. El mayor riesgo lo llevan las personas que trabajan con los productos y concentrados técnicos como manufactura, reformulación o reenvase de concentrados sin equipo apropiado.
Debido a que la principal forma de de exposición a los plaguicidas, es la dérmica, causada por el manejo en la mezcla y aplicación de estos, existe la alternativa de elegir dentro de las formulaciones de los productos para usar la que menos se exponga a la piel; a continuación se presentan las características de ciertas formulaciones:
1.- Los concentrados de aceites y los concentrados emulsificables de la mayoría de los productos químicos penetran muy fácilmente por la piel.
2.- Las formulaciones sólidas, permiten menor penetración cutánea debido a la absorción del producto por el portador que es la arcilla u otro material.
Los granulados son mucho más confiables para trabajar y evitar la exposición dérmica, y si son recubiertos es mucho mejor.
Otro aspecto a tomar en cuenta al momento de la aplicación, para disminuir la exposición al plaguicida, es manejar el tamaño adecuado de la gota, para evitar deriva y toxicidad; al utilizarse polvos deben de tomarse las medidas necesarias para evitar problemas de dispersión.
La contaminación por evaporación del producto puede ser considerada si se entra en contacto cercano al área de aplicación, estos producto volátiles pueden ser aplicados en bajas concentraciones para disminuir el riesgo.
Dedicar atención a la formulación apropiada, entonces, puede resultar no solamente en un control de plagas más eficaz y seguro, sino también evitar la exposición humana y contaminación ambiental. La formulación puede ser un producto comercial o el resultado de una mezcla en tanque con aditivos apropiados para lograr las propiedades deseadas.
En muchos casos se ha visto que el agricultor no considera mucho el desecho adecuado de los envases. Para evitar que él siga contaminando, el se debe de asegurar de que cuando vacíe un envase de plaguicidas, que enjuague completamente el envase antes de desecharlo. Esto se hace con la finalidad de reducir la cantidad de plaguicida de desperdicio que permanece en el envase y si enjuaga varias veces el envase y utiliza esa agua para aplicarla, estaría dando un mejor uso a su inversión.
Por lo general el agricultor utiliza el suelo para desechar los desperdicios, si se hace de esta manera, se debe de seleccionar un sitio que este lejos de la casa o donde los animales no tengan acceso al sitio y principalmente lejos de cualquier fuente de agua.
Con el fin dar solución a la problemática planteada, se han desarrollado una serie de tecnologías, agrupadas básicamente en lo que se conoce como Técnicas MIP, unidas a la vuelta a técnicas tradicionales de producción, como es la Producción Orgánica.
Ing. Tomás García Minaya
CONCEPTOS GENERALES
Antes de comentar los aspectos específicos de esta presentación es preciso analizar algunos conceptos, como por ejemplo: qué se entiende por Medio Ambiente? Para (Bru 1988) es la totalidad del entorno material de la vida humana, tanto natural como no. Así mismo, el deterioro ambiental se origina por la acción del hombre como ser social y es la materialización de un proceso histórico de explotación abusiva del medio, basado en premisas ideológicas y formas de organización social. Para Folch (1978) la ciencia ecologista es aquella cuya finalidad es la integración de los aspectos sociales, políticos e ideológicos implicados en el uso humano de los ecosistemas. Se entiende por plaguicidas, las sustancias o ingredientes activos, así como las formulaciones o preparados que contengan una o varias de dichas sustancias o ingredientes activos cuya finalidad sea la de actuar como raticida, desinfectante, insecticida, fungicida, repelente, atrayente, etc.
Desde tiempos inmemoriales el hombre siempre ha causado efectos sobre el ecosistema del cual forma parte. Con el correr del tiempo y el desarrollo de la ciencia y la tecnología esas se han profundizado; es decir que el hombre al aumentar su comodidad y su seguridad, amenaza con trastornar los ecosistemas naturales a un grado casi irreversible.
La primera modificación significativa sobre el ecosistema comenzó con el desarrollo de la agricultura Cuando el hombre era simplemente un recolector de alimentos, su efecto sobre el medio ambiente era mínimo y reducido únicamente a la vecindad inmediata del fuego que mantenía, para el calor y cocinar los alimentos.
Con el advenimiento de la agricultura los efectos aumentaron, hubo necesidad de clarear los bosques de su vegetación natural, para la plantación de los cultivos. La cantidad creciente de alimentos disponibles debido a las plantaciones, estimuló el rápido crecimiento de la población humana, más personas, significó más ocupación de tierras y por lo tanto, aumento a los efectos sobre el medio ambiente.
Con la expansión de la agricultura floreció el comercio que llevo al movimiento entre las poblaciones. Al aumenta la población hubo necesidad de cambiar el estilo de vida, volviéndose cada vez más compleja. Aparecieron entonces, otras actividades tales como la industria el transporte, la construcción urbana y otros caracteres de la vida moderna, señaladas como actividades humanas ecológicamente alteradoras, ya que han tenido consecuencias negativas en le medio ambiente.
4.2.- LA PRODUCCIÓN AGROPECUARIA MODERNA Y SU IMPACTO AMBIENTAL
La producción tradicional, hizo crisis ante un factor considerado primario como lo es el "Mercado". La sociedad ejerció una demanda creciente de productos agropecuarios y así mismo cualificados sobre ciertos productos (carnes). Este efecto no pudo ser correspondido por esa producción tradicional, por lo cual se produjo un desajuste entre oferta y demanda de productos. De esta forma y para dar respuesta parcial a ello, el productor recurrió a la compra masiva de insumos y venta de productos, ingresando en la economía monetaria.
Se produjo entonces el llamado "primer impacto ambiental", en donde el productor recurre a:
- Mecanización
- Empleo de productos químicos (fertilizantes, plaguicidas, conservantes, etc).
- Roturaciones (labranzas) improcedentes.
Todos estos factores llevaron a la alteración del paisaje y al inicio de la contaminación ambiental.
Por otra parte, como consecuencia de este aumento en el consumo, los precios tendieron a elevarse y ser recurrió a la importación de productos. Todo ello atrajo las inversiones de capital extra agrario, conformándose finalmente las características de la agricultura y la ganadería "modernas" que provocaron el "segundo impacto ambiental".
Dichas características son:
- Concentración de la producción, generalmente próxima a los centros de consumo y en unidades de gran magnitud.
- Especialización de la producción, creando núcleos. Todo esto trajo aparejado la disminución en el número de explotaciones, con sus implicancias.
Intensificación de la producción, independizándose del factor tierra para ser independiente.
En el caso de la agricultura, estas características trajeron aparejado:
- Un excesivo uso de fertilizantes, deyecciones animales y plaguicidas, que provocaron en muchos casos contaminación del agua, suelo y aire, además de inconvenientes en la salud de las personas y dudosa calidad de los productos.
- Problemas ambientales, a través de alteración del paisaje, pérdida de la biodiversidad, como también trastornos en la salud.
En el caso de las explotaciones ganaderas, la cronología de este modelo intensivo comenzó con la producción de huevos, seguida por la de pollos, luego los cerdos, para llegar también a los vacunos para carne y leche y otras especies de menor importancia, siendo algunas de sus consecuencias:
- Elevados volúmenes de excrementos y su eliminación, con los problemas de filtración de nitrógeno y fósforo (eutrofización), emisión de metano, dióxido de carbono, amoníaco, sulfídrico. Metales pesados, problemas sanitarios (microorganismos, zoonósis).
- La calidad biológica de las carnes es muy cuestionada, debido al importante uso de antibióticos, pigmentantes, anabólicos y promotores del crecimiento que se utiliza en estos sistemas.
Este modelo intensivo basado en la inversión de capitales, tiene como único objetivo de producción la maximización del beneficio y la producción masal, siendo semejante a
Cualquier proceso de tipo industrial.
4.3.- CAUSAS PRINCIPALES DE LOS PROBLEMAS AMBIENTALES
Como ya dijimos las actividades humanas siempre han producido cambios en el medio ambiente, sin embargo no es sino hasta las ultimas décadas que el impacto de las actividades humanas sobre el medio ambiente se acelero y se hizo mas profundo. Las presiones de vida al rápido crecimiento de la población, el consumo prodigo y descontrolado, la urbanización, la expansión industrial y los avances de la ciencia y tecnología han causado estos cambios acelerados en el medio ambiente.
Entre las causas principales del deterioro ambiental podemos mencionar:
- El rápido crecimiento de la población
- Nuevos problemas a través de la ciencia y la tecnología
- El desarrollo y la industrialización
- Concentración de la población humana.
Estas actividades humanas tienen como consecuencia la contaminación de los medios básicos para la vida tales como: aire, agua y suelo.
4.4.- PROBLEMAS AMBIENTALES DE LA REPUBLICA DOMINICANA
En RD. los problemas ambientales son incontables debido en gran medida a la falta de una conciencia ambiental tanto de autoridades como de pueblo en general, aunado a esto el acelerado crecimiento demográfico con una deficiente infraestructura para atenderlo y los cambios sociales y económicos que experimenta el país.
Sin embargo resulta difícil hacer un estudio profundo de la contaminación ambiental en nuestro país. ya que la información científica con que se cuenta es deficiente, es así que nos hemos visto en serias dificultades para identificar los principales productos agroquímicos contaminantes.
El agua es uno de los elementos que en mayor proporción esta presente en la vida del hombre. Es utilizada para el abastecimiento humano, en la agricultura y en la industria lo que provoca la contaminación de la misma. La contaminación de las aguas digna de tenerse en cuenta es la producida por residuos agrícolas: plaguicidas y fertilizantes, y que llegan a las corrientes superficiales y a las aguas subterráneas.
Hace varios años el uso de plaguicidas en el país se limitaba principalmente en las fincas de hortalizas y algodoneras. Desde entonces los productores y distribuidores de insumos agrícolas intensificaron la promoción comercial de plaguicidas y fertilizantes. Sin embargo, no se hicieron esfuerzos por educar a los usuarios de plaguicidas sobre los peligros asociados con las sustancias químicas ni sobre la ciencia de su manejo.
Las diluciones y medidas no son exactas y los productos se mezclan sin precaución. Este problema no solo afecta la salud pública, sino también tiene efectos negativos sobre los suelos.
Los plaguicidas mas usados antes de 1981 eran casi exclusivamente Órgano clorados y hay evidencia de que estos productos persisten en los suelos de la Rep. Dominicana.
El uso actual de plaguicidas a base de Piretroides, Carbamatos y productos Órgano fosforados es muy intenso y aunque la biodegradación de estas sustancias en los suelos tropicales es relativamente rápida, su manejo inapropiado sobrecarga los suelos con productos químicos tóxicos y sus metabolitos.
Aunque en R.D. no se han hecho estudios exhaustivos en todo el país, si se sabe que en las zonas donde se practican cultivos intensivos hay problemas serios de contaminación como es el caso de Constanza.
A medida que se manipulan los plaguicidas, se corre un alto riesgo de entrar en contacto con estos; este riesgo depende de la atención en el tiempo de manipuleo y del uso de la indumentaria adecuada para trabajar con estos. El mayor riesgo lo llevan las personas que trabajan con los productos y concentrados técnicos como manufactura, reformulación o reenvase de concentrados sin equipo apropiado.
Debido a que la principal forma de de exposición a los plaguicidas, es la dérmica, causada por el manejo en la mezcla y aplicación de estos, existe la alternativa de elegir dentro de las formulaciones de los productos para usar la que menos se exponga a la piel; a continuación se presentan las características de ciertas formulaciones:
1.- Los concentrados de aceites y los concentrados emulsificables de la mayoría de los productos químicos penetran muy fácilmente por la piel.
2.- Las formulaciones sólidas, permiten menor penetración cutánea debido a la absorción del producto por el portador que es la arcilla u otro material.
Los granulados son mucho más confiables para trabajar y evitar la exposición dérmica, y si son recubiertos es mucho mejor.
Otro aspecto a tomar en cuenta al momento de la aplicación, para disminuir la exposición al plaguicida, es manejar el tamaño adecuado de la gota, para evitar deriva y toxicidad; al utilizarse polvos deben de tomarse las medidas necesarias para evitar problemas de dispersión.
La contaminación por evaporación del producto puede ser considerada si se entra en contacto cercano al área de aplicación, estos producto volátiles pueden ser aplicados en bajas concentraciones para disminuir el riesgo.
Dedicar atención a la formulación apropiada, entonces, puede resultar no solamente en un control de plagas más eficaz y seguro, sino también evitar la exposición humana y contaminación ambiental. La formulación puede ser un producto comercial o el resultado de una mezcla en tanque con aditivos apropiados para lograr las propiedades deseadas.
En muchos casos se ha visto que el agricultor no considera mucho el desecho adecuado de los envases. Para evitar que él siga contaminando, el se debe de asegurar de que cuando vacíe un envase de plaguicidas, que enjuague completamente el envase antes de desecharlo. Esto se hace con la finalidad de reducir la cantidad de plaguicida de desperdicio que permanece en el envase y si enjuaga varias veces el envase y utiliza esa agua para aplicarla, estaría dando un mejor uso a su inversión.
Por lo general el agricultor utiliza el suelo para desechar los desperdicios, si se hace de esta manera, se debe de seleccionar un sitio que este lejos de la casa o donde los animales no tengan acceso al sitio y principalmente lejos de cualquier fuente de agua.
Con el fin dar solución a la problemática planteada, se han desarrollado una serie de tecnologías, agrupadas básicamente en lo que se conoce como Técnicas MIP, unidas a la vuelta a técnicas tradicionales de producción, como es la Producción Orgánica.
Ing. Tomás García Minaya
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